Name: Sujeción manual y de las rutas de la administración del compuesto en ratones y ratas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-26T12:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 10 s
Description: Aprende técnicas de sujeción manual y administración de compuestos en ratones y ratas. Este método demuestra inyecciones intraperitoneales, subcutáneas y gavage oral para investigación biomédica segura.

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La investigación presentada aquí fue apoyada por Charles River.

<ol><li>Turner, P. V., Brabb, T., Pekow, C., Vasbinder, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Administration+of+substances+to+laboratory+animals%3A+routes+of+administration+and+factors+to+consider%5BTitle%5D)+AND+%22JAALAS%22%5BJournal%5D)">Administration of substances to laboratory animals: routes of administration and factors to consider.</a> JAALAS. 50, 600-613 (2011).</li>
<li>Diehl, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+good+practice+guide+to+the+administration+of+substances+and+removal+of+blood%2C+including+routes+and+volumes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Toxicol%22%5BJournal%5D)">A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes.</a> J. Appl. Toxicol. 21, 15-23 (2001).</li>
<li>Hurst, J. L., West, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Taming+anxiety+in+laboratory+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Taming anxiety in laboratory mice.</a> Nat. Methods. 7, 825-826 (2010).</li>
<li>Maurer, B. M., Döring, D., Scheipl, F., Küchenhoff, H., Erhard, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+a+gentling+programme+on+the+behaviour+of+laboratory+rats+towards+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Anim.+Behav.+Sci%22%5BJournal%5D)">Effects of a gentling programme on the behaviour of laboratory rats towards humans.</a> Appl. Anim. Behav. Sci. 111, 329-341 (2008).</li>
<li>Cloutier, S., Newberry, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+conditioning+technique+to+reduce+stress+associated+with+repeated+intra-peritoneal+injections+in+laboratory+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Anim.+Behav.+Sci%22%5BJournal%5D)">Use of a conditioning technique to reduce stress associated with repeated intra-peritoneal injections in laboratory rats.</a> Appl. Anim. Behav. Sci. 112, 158-173 (2008).</li>
<li>Romanovsky, A. A., Kulchitsky, V. A., Simons, C. T., Sugimoto, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methodology+of+fever+research%3A+why+are+polyphasic+fevers+often+thought+to+be+biphasic%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Methodology of fever research: why are polyphasic fevers often thought to be biphasic.</a> Am. J. Physiol. 275, 332-338 (1998).</li>
<li>Turner, P. V., Pekow, C., Vasbinder, M. A., Brabb, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Administration+of+substances+to+laboratory+animals%3A+equipment+considerations%2C+vehicle+selection%2C+and+solute+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22JAALAS%22%5BJournal%5D)">Administration of substances to laboratory animals: equipment considerations, vehicle selection, and solute preparation.</a> JAALAS. 50, 614-627 (2011).</li>
<li>Lukas, G., Brindle, S. D., Greengard, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+route+of+absorption+of+intraperitoneally+administered+compounds%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Exp.+Ther%22%5BJournal%5D)">The route of absorption of intraperitoneally administered compounds.</a> J. Pharmacol. Exp. Ther. 178, 562-564 (1971).</li>
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<li>AALAS. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22LAT+Training+Manual%22">LAT Training Manual</a>. , AALAS. (2009).</li>
<li>AALAS. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22LATg+Training+Manual%22">LATg Training Manual</a>. , AALAS. (2009).</li>
<li>Barnett, S. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBarnett%2C+SW+%22Manual+of+Animal+Technology%22">Manual of Animal Technology</a>. , Wiley-Blackwell. 440(2007).</li>
<li>Baumans, V., Pekow, C. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBaumans%2C+V+%22Handbook+of+Laboratory+Animal+Science%22">Handbook of Laboratory Animal Science</a>. Hau, J., Schapiro, S. J. 1, CRC Press. 401-446 (2010).</li>
<li>Bogdanske, J. J., Hubbard-Van Stelle, S., Riley, M. R., Schiffman, B. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBogdanske%2C+JJ+%22Laboratory+Mouse+Procedural+Techniques%22">Laboratory Mouse Procedural Techniques</a>. , CRC Press. (2011).</li>
<li>Danneman, P., Suckow, M. A., Brayton, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDanneman%2C+P+%22The+Laboratory+Mouse%22">The Laboratory Mouse</a>. , CRC Press. (2000).</li>
<li>Sharp, P. E., La Regina, M. C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSharp%2C+PE+%22The+Laboratory+Rat%22">The Laboratory Rat</a>. , CRC Press. (1998).</li>
</ol>

Los autores son empleados de Charles River.

Este protocolo debe ser visto como una introducción al manejo de los animales y la administración de sustancias destinadas a complementar la formación práctica prevista en las instalaciones del investigador. Los medios de sujeción que se utilizará y las vías de administración sustancia debe ser considerada en el diseño experimental y cuando el protocolo de investigación o comité de ética de protocolo está escrito. Formación en procedimientos relacionados con los animales es vital para el éxito de la investigación. Para llevar a cabo la mayoría de los experimentos, los animales serán manipulados por el personal de investigación, y el mejor es el manejo de los animales, menos hincapié en el animal 3. Acostumbrar a los animales al contacto humano suave puede reducir el estrés y hacer que los animales sujetos de investigación más manejables 4,5. Manejo de estrés se ha demostrado que afecta a algunos tipos de investigación 6 y es posible que puede afectar a los demás. Restricción de roedores debe realizarse con cuidado, pero la gestión de la empresa (una tentativaagarre es probable que resulte en daño a los roedores y el guía) y debe ser durante el menor tiempo práctico. Métodos de inmovilización se suelen elegir en función del tamaño del animal o buscó el acceso. Por ejemplo, el manejo de las ratas adultas por la piel, aunque es posible, a menudo se encontró con una fuerte resistencia de la rata, especialmente si el controlador no tiene experiencia. Sosteniendo un ratón o una rata a mano puede hacer que el acceso a las venas de la cola difícil y un dispositivo de sujeción se elige a menudo para mantener al animal lo más quieto posible. Cuando los investigadores manejar animales, a menudo se busca para administrar un compuesto o biológico para el estudio adicional. La vía de administración de las sustancias pueden afectar la absorción, la biodisponibilidad, y la idoneidad para un experimento particular. La familiaridad con varias rutas deben proporcionar a los investigadores con la capacidad de administrar sus bienes de la mejor manera posible para su investigación. Por ejemplo, una ruta que promueve la absorción rápida de una sustancia, Tal como intravenosa o intraperitoneal, no debe usarse si el investigador desea administrar la sustancia de una manera más lenta de acción prolongada. Revisiones recientes de algunas de estas técnicas y consideraciones para el volumen, el equipo, y el soluto se pueden encontrar en dos artículos por Turner et al. 1,7 Siempre que las sustancias se administran a roedores de laboratorio, se debe tener en cuenta el tamaño adecuado del equipo y el volumen de la sustancia (que se señala en la Tabla 1). Incorrectamente equipos de tamaño o grandes cantidades puede ocasionar molestias, lesiones o muerte del animal. En general, las sustancias administradas por vía parenteral son estériles, salvo que de los objetivos de la investigación que hagan imposible (es decir, estudios, bacterianas). Los compuestos y sustancias biológicas deben estar en un soluto o vehículo que tiene el menor efecto sobre el animal. A pH fisiológico (7,3 -7,4) es generalmente bien aceptado, especialmente para administración subcutánea, intramuscular, y intraperutas ritoneal. No fisiológicas los niveles de pH en sustancias administradas por estas rutas puede dar lugar a dolor o necrosis y daño tisular. Intervalos más amplios de pH se toleran con rutas intragástricas e intravenosa 7. En roedores pequeños, otra consideración importante es la posibilidad de refrigeración si grandes volúmenes de fluidos de temperatura ambiente se les da. Si los líquidos se administran por vía intravenosa o por vía intraperitoneal, especialmente en apoyo de un animal enfermo, que debe calentarse a la temperatura corporal (37 ° C). Las vías de administración descritos en este protocolo son los de uso común en muchos programas de investigación, son fáciles de dominar, y generalmente no requiere anestesia. Una casi infinita variedad de vías de administración son posibles, sin embargo, incluyendo intracraneal, intratecal, epidural, intratraqueal intraósea, intraarticular y para nombrar sólo unos pocos. La formación en estas rutas especializadas de la administración se debería pedir a las personas quo tienen una amplia experiencia con la ruta y buenos resultados. En roedores, la vía intranasal se utiliza típicamente para estudiar sustancias introducidas a los pulmones a través de una más &quot;natural&quot;; método de instilación intratraqueal. Los ratones y las ratas son obligados nariz-respiraderos, de modo induciéndolos a inhalar cantidades muy pequeñas de fluido no es difícil, incluso en animales conscientes. Desde la mucosa nasal está bien provisto de los vasos sanguíneos, la administración intranasal de algunas sustancias pueden ser similares a la administración intravenosa. Esta ruta no se recomienda en animales con rinitis, sin embargo, como que puede comprometer la absorción. Los intentos para administrar grandes volúmenes por vía intranasal puede causar disnea o ahogo del animal. Las inyecciones intramusculares proporcionar una rápida absorción de las sustancias. Las inyecciones intramusculares pueden ser un reto en ratas y ratones, debido a su pequeño tamaño y los músculos correspondientemente pequeñas. Se realizan en la pata traseras. Debido a la posibilidad de daño del nervio ciático, el cuádriceps femoral es el músculo de elección. Aunque tanto la forma subcutánea o intradérmica afectan a la piel, existen diferencias entre la biodisponibilidad de las sustancias colocadas en la piel frente a la hipodermis. La administración subcutánea a menudo se considera una &quot;deposición&quot; ruta, con una absorción más lenta que otras rutas, tales como intravenosa o intraperitoneal. La administración intradérmica se utiliza para volúmenes muy pequeños de sustancias, típicamente de sustancias inmunoestimulantes, tales como mezclas de antígeno-adyuvante. En ambos casos, las sustancias administradas deben ser de pH fisiológico y no irritante. Intradérmica o subcutánea no se debe realizar en la nuca, ya que esto es un sitio de restricción de uso general para el roedor. La administración intravenosa e intraperitoneal a menudo se consideran equivalentes en roedores. Las vías intravenosa de dosificación proporcionan más rcaptación apid de compuestos, sin embargo, mientras que la administración intraperitoneal debe ser considerado aproximadamente equivalente a la administración oral 8. Se debe tener cuidado con los compuestos administrados por vía intraperitoneal, ya que pueden causar dolor si no se tamponado. La ruta común de la administración de bolo intravenoso en roedores es a través de las venas de la cola. Si la administración crónica intravenosa de una sustancia se desea, la implantación de cánulas venosa o arterial debe ser considerado. Sustancias administradas por vía intravenosa debe ser entregado asépticamente y debe ser demostrado ser segura para administrar por vía intravenosa. Por ejemplo, las sustancias que pueden inducir la hemólisis, trombosis, vasculitis o no son apropiados para la administración intravenosa. La ruta sonda intragástrica u oral se utiliza a menudo para imitar una ruta de dosificación común en los seres humanos. También permite una dosificación precisa de las sustancias en comparación con la administración oral a través de los alimentos o el agua. La biodisponibilidad de los compuestosadministrado a través de sonda variará basado en el estado de alimentación / ayuno del animal, así como el soluto o vehículo del compuesto o biológico. Agujas por sonda o alimentación debe ser del tamaño apropiado para el animal que está siendo utilizado, y se deben limpiar entre los animales, si agujas desechables por sonda no son prácticos. Las lesiones causadas por sonda no son infrecuentes e incluyen la deposición de la sustancia en el pulmón o la rotura del estómago o el esófago. La capacitación debe ser supervisado por un partido experimentado y realizado en animales sacrificados en primer lugar, entonces los animales anestesiados (que serán sacrificados) antes sonda en animales despiertos se intenta. Primeros intentos por sonda nasogástrica en animales despiertos debe involucrar promedio animales de tamaño y volúmenes pequeños de una sustancia, tal como solución salina, que no causen daño si el procedimiento sale mal. Los animales deben ser cuidadosamente evaluados para detectar signos de angustia, como el jadeo, convirtiendo sangrado azul, o salivación excesiva, después de alimentación forzada y la eutanasia si es necesario. Si euthAnasia se requiere, el animal debe ser necropsia para determinar por qué el procedimiento de sonda falló.

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios </td></tr><tr><td> Needles </td><td> Vario </td><td> Vario </td><td> Las agujas se venden por tanto calibre y longitud. Compruebe tanto antes de ordenar. </td></tr><tr><td> Jeringas </td><td> Vario </td><td> Vario </td><td> Siempre elegir un tamaño apropiado para el volumen a administrar. </td></tr><tr><td> DecapiCones </td><td> Braintree Scientific </td><td> DC-200, DCL-120, MDC-200 </td><td> Disponible en ratón y rata tamaños. </td></tr><tr><td> Roedores restrainer </td><td> Harvard Apparatus, Braintree Scientific, Plas-Labs, otros </td><td></td><td> Disponible en Plexiglas, de plástico ajustable, y un tamaño para ratones y ratas. </td></tr><tr><td> Tubo cónico de 50 ml </td><td> Vario </td><td> &amp; Nbsp; </td><td></td></tr><tr><td> Agujas de alimentación </td><td> VWR, Popper and Sons </td><td> Vario </td><td> Coloque el calibre y longitud de aguja a los animales como se describió anteriormente. Ambas agujas de alimentación desechables y reutilizables están disponibles. </td></tr></tbody></table>

sujeción manual y de las rutas de la administración del compuesto en ratones y ratas

Manual Restraint and Common Compound Administration Routes in Mice and Rats

Ser capaz de reprimir con seguridad y eficacia ratones y ratas es una parte importante de la realización de investigaciones. Trabajar con seguridad y humanamente con los ratones y las ratas requiere un conocimiento básico de los métodos de manipulación y sujeción. En este artículo se presentan los principios básicos necesarios para manejar con seguridad los animales. Con una sola mano, a dos manos, y la restricción de objetos de sujeción especialmente diseñados se ilustra. A menudo, otra parte de la investigación o el uso de pruebas de los animales es la administración efectiva de los compuestos a ratones y ratas. Aunque hay un gran número de posibles vías de administración (limitado sólo por el tamaño y órganos del animal), la mayoría no se utilizan regularmente en la investigación. Este vídeo se ilustran varias de las rutas más comunes, incluyendo la administración intravenosa, intramuscular, subcutánea, y una sonda oral. El objetivo de este artículo es exponer un espectador familiarizado con estas técnicas a la restricción básica y vías de administración de sustancias. Este videono reemplaza práctica requeridas capacitación en sus instalaciones, pero tiene la intención de aumentar y complementar la formación.

Trabajar con seguridad y humanamente con los roedores de investigación requiere una competencia básica en métodos de manipulación y sujeción. En este artículo se presentan los principios básicos que se requieren para manejar con seguridad y eficacia administrar compuestos a ratones y ratas.

Sujeción manual y de las rutas de la administración del compuesto en ratones y ratas

La capacidad de sujetar ratones y ratas de manera segura y eficaz es una parte importante de la realización de investigaciones. Trabajar con confianza y de forma humanitaria con ratones y...

El objetivo general del siguiente video es familiarizar al espectador con diversas técnicas utilizadas para la contención manual y la administración de compuestos en ratones y ratas. Los ratones y las ratas pueden contenerse mediante varias técnicas con una o dos manos o con el uso de contenedores plásticos, así como mediante técnicas para la administración de compuestos, tales como vía intraperitoneal, subcutánea, intravascular e intradérmica. En este video se demuestran métodos de inyección, así como la administración por gavaje oral y vía intranasal.Aprender a manipular animales con confianza, suavidad y seguridad es una parte importante de la investigación in vivo. Los animales siempre deben manipularse de una manera segura tanto para el animal como para el investigador. Por lo general, las personas nuevas en estos métodos pueden tener dificultades, ya que se necesita tiempo para sentirse cómodos trabajando con roedores.Los roedores también pueden intimidar o asustar a las personas que son nuevas en el trabajo con ellos. La demostración visual de la administración de la dosis y las técnicas de contención es fundamental tanto para la administración exitosa del compuesto como para prevenir angustia o lesiones al animal y al que lo contiene. Los ratones pueden contenerse manualmente utilizando una técnica con una o dos manos.El primer paso de cualquiera de los métodos consiste en levantar suavemente al ratón por la base de la cola y colocarlo sobre la rejilla metálica de la tapa del jaulón, o sobre una superficie rugosa similar. Para la técnica con una sola mano, coloque la base de la cola entre el tercer y el cuarto dedo mientras tira suavemente hacia atrás de la cola. Esto hará que el ratón agarre la superficie y tire hacia adelante.A continuación, sujete firmemente al ratón por la nuca con la misma mano que sostiene la cola. Agarre con el dedo índice y el pulgar cerca de la base de la cabeza y extienda el agarre hacia la espalda incorporando los dedos medio y anular.Asegúrese de aplicar suficiente presión sobre la piel alrededor del cuello para evitar que el ratón gire o se retuerza, pero no tanta que el animal no pueda respirar. La técnica con ambas manos es similar, excepto que mientras una mano tira suavemente de la cola, la otra mano sujeta firmemente al ratón por la nuca, con la cola en una mano y la nuca en la otra. Levante al ratón e introduzca la base de la cola entre la palma y el tercer o cuarto dedo de la mano que sostiene la nuca.Como antes, asegúrese de que el agarre sea firme, pero que aún permita que el animal respire. El agarre del pescuezo en la rata generalmente se realiza con ambas manos. Primero, retire a la rata de su jaula y colóquela sobre una superficie rugosa.A continuación, sujete la rata por la cola con la mano no dominante y tire hacia atrás suavemente. Sostenga firmemente la cola con una mano y acerque la otra desde la parte posterior hacia la nuca de la rata. Aplique una presión suave sobre la espalda de la rata mientras avanza hacia los omóplatos.Y finalmente, agarrando el pescuezo entre los dedos y la palma de la mano. Las ratas pueden emitir sonidos cuando se las restringe de esta manera. Al utilizar un agarre por encima del hombro, sujete la rata por la cola con la mano dominante y tire suavemente hacia atrás.A continuación, coloque la mano no dominante sobre la espalda de la rata acercándose por la parte trasera. Sujete a la rata alrededor del tórax con el anular, meñique y pulgar. La cabeza de la rata debe quedar entre el índice y el dedo medio.Otro método de inmovilización es el agarre por debajo de los hombros. Sujete la cola con la mano dominante como se ha visto anteriormente y coloque la mano no dominante sobre la espalda de la rata, acercándose desde la parte trasera. A continuación, agarre la rata alrededor del tórax justo debajo de los omóplatos.Los antebrazos de la rata deben empujarse suavemente hacia arriba con el pulgar y el índice. Los antebrazos deben cruzarse bajo el mentón de la rata, impidiendo que muerda. La rata puede sujetarse de esta manera con una sola mano si el cuerpo se estabiliza contra el manipulador.Una pieza plástica delgada de forma cónica y flexible, llamada cono de Decapic, también puede utilizarse para inmovilizar al animal. Empuje al animal hacia adelante hasta que su nariz sobresalga por el orificio en el extremo del cono Decapic; luego, mantenga la bolsa cerrada alrededor de la cola o use una banda elástica o un sujetador de torsión para asegurar al animal en su lugar. Una vez inmovilizado, se pueden administrar inyecciones a través del material plástico. Un recipiente plástico rígido resulta útil cuando se necesita acceso a la cola. Introduzca la rata según lo descrito por el fabricante del dispositivo. Con este tipo de sujetador, se tira suavemente de la rata hacia atrás, por la cola, para colocarla en la sujeción. Coloque el cierre en la parte frontal del dispositivo y ajústelo para limitar los movimientos del animal.Si los animales parecen agitados, se puede utilizar la sujeción con toalla al colocarla sobre el animal; la oscuridad y la sujeción suave que proporciona la toalla pueden calmar a una rata inquieta. Coloque la toalla suavemente sobre la rata y luego sujétela cuidadosamente alrededor del cuerpo. Envuelva la toalla alrededor de la rata, asegurándose de no cubrir la nariz del animal.Mueva la toalla de modo que quede expuesta la parte del cuerpo destinada a la inyección. Antes de realizar cualquiera de las siguientes técnicas de administración, es recomendable practicar el manejo de la jeringa. Idealmente, una mano manipulará la jeringa mientras la otra inmoviliza al animal. Las agujas se insertan mejor en el animal con el bisel hacia arriba, especialmente para inyecciones intravenosas.Las agujas de calibre fino se dañan fácilmente al insertarse en los tapones de los viales. Utilice un calibre más grande para extraer los materiales y luego sustitúyalo por uno más pequeño para la inyección. La administración intranasal se utiliza para ciertos tipos de agentes infecciosos en estudios de alergia y asma, y en algunas investigaciones que implican los pulmones.La administración intranasal no requiere anestesia ni cirugía, a diferencia de la instalación intratraqueal. Para la administración intranasal, se debe inmovilizar al animal como se describió anteriormente y, mediante una jeringa o pipeta, colocar una pequeña cantidad del material que se desea inhalar en las fosas nasales del animal. Observar que el material penetre en las fosas nasales y repetir según sea necesario.Los compuestos se administran por vía intramuscular si requieren una absorción rápida y pueden administrarse en volúmenes muy pequeños. La contención para las inyecciones intramusculares puede requerir dos personas, ya que una de las patas traseras debe estar libre y estabilizada para la inyección. Introduzca la aguja perpendicularmente a la piel sobre el músculo cuádriceps o el músculo del muslo lateral del animal.Tenga cuidado de no inyectar en la masa muscular posterior, ya que es posible dañar el nervio ciático. La administración intraperitoneal se elige cuando se debe administrar un gran volumen de compuesto y cuando es aceptable la velocidad de absorción, para aproximarla a la de la administración oral.Para realizar una inyección intraperitoneal, sujete al animal y dirija la punta de su nariz hacia el suelo. Para exponer el abdomen, localice la línea media del animal y mentalmente divida el abdomen en cuadrantes.Elige un sitio de inyección en los cuadrantes inferiores, especialmente en el cuadrante inferior derecho del animal. Utiliza una jeringa y una aguja de tamaño adecuado para inyectar el material en el animal. La administración subcutánea de una sustancia se utiliza cuando se desea una absorción lenta.Los ratones y las ratas tienen una gran cantidad de piel suelta, por lo que se pueden administrar volúmenes relativamente más grandes por vía subcutánea en comparación con los humanos. Para las inyecciones subcutáneas, sujete al animal de forma suelta como se ha mostrado anteriormente. Tome la piel y levántela suavemente hacia arriba.Formando una tienda con una jeringa y una aguja de tamaño adecuado, inserte la aguja en un ángulo de 30 a 45 grados dentro de la piel levantada e inyecte el material. Una pequeña hinchazón bajo la piel es señal de una inyección exitosa. Si los animales deben manipularse rutinariamente después de la inyección subcutánea, no utilice la nuca.En cambio, utilice la piel de la grupa dorsal. Si los animales deben recibir múltiples inyecciones subcutáneas, alterne los sitios de inyección. La contención de los animales durante la administración intradérmica puede ser difícil y requerir el uso de sedación química. Si se utiliza un anestésico, asegúrese de que no interfiera con los objetivos de la investigación.Al realizar una inyección intradérmica, primero retire el vello del sitio de inyección para que la piel quede claramente visible en el lugar de la inyección. Introduzca una aguja del tamaño adecuado en la piel con un ángulo de 15 a 30 grados. No introduzca la aguja muy profundamente.Si se inserta correctamente, la inyección debería encontrar resistencia. Una pequeña bleb, que será más pálida que la piel circundante, será visible si la inyección fue exitosa. Aplique presión suave para evitar el reflujo del material.La administración intravascular se utiliza para una amplia variedad de compuestos y es la vía óptima cuando el compuesto puede formularse adecuadamente y se desea un efecto muy rápido. Para una inyección intravascular en la vena lateral de la cola, sujete al animal en un cono para decapitación o en un sujetador de roedor de plástico. Como se ha demostrado anteriormente, sostenga la cola del animal por la punta con la mano no dominante para enderezarla y rotarla. Gire un cuarto de vuelta para colocar las venas de la cola en posición dorsal.Identifique una de las dos venas laterales de la cola para la inyección, evitando la arteria ventral de la cola. Acérquese a la porción distal de la cola con la aguja formando un ángulo de 15 a 20 grados e inyecte el material. Una inyección exitosa hará que el material entre en la vena sin resistencia y que la vena de la cola se vuelva pálida durante toda la inyección.Colocar la inyección más distalmente preserva una porción intacta de la vena que puede utilizarse si el primer intento no tiene éxito. La administración intragástrica o por gavaje oral solo se realiza en animales restringidos y despiertos, ya que la anestesia o la sedación aumentan el riesgo de aspiración. Los compuestos cuya seguridad se evalúa para administración oral humana a menudo se administran de esta manera. Comience seleccionando una aguja de alimentación oral de tamaño adecuado.La longitud se determina sosteniendo al animal restringido en posición vertical y midiendo desde la comisura de la boca. La punta esférica de la aguja de alimentación debe llegar hasta la última costilla del animal; restrinja al animal de modo que su cabeza y su cuerpo estén en línea recta y vertical.Esto endereza el esófago, lo que permite un paso más fácil de la aguja de alimentación. Inserte la punta esférica de la aguja en la boca del animal por encima de la lengua. Una vez que la aguja esté en su lugar, levante la aguja y la jeringa presionando suavemente contra el paladar, de modo que la nariz del animal quede orientada hacia el techo.Puede ser necesario redirigir ligeramente la aguja al pasar la parte posterior de la garganta. Cualquier tensión en la aguja indica la necesidad de ajustar la posición; continúe pasando la aguja hasta alcanzar la distancia predeterminada. La aguja debe avanzar fácilmente y el animal no debe jadear ni ahogarse al administrar la sustancia.Si hay resistencia o si el animal jadea, se ahoga o se pone azul, deténgase inmediatamente y retire la aguja. Una vez dominadas, estas técnicas le permitirán administrar dosis de forma segura tanto a ratas como a ratones y restringirlos eficazmente. Al intentar estos procedimientos, es importante recordar que un animal correctamente restringido hace que el procedimiento sea seguro tanto para el animal como para el manipulador.No olvide que trabajar con animales en la ciencia es un privilegio y una responsabilidad. Elegir el método de contención correcto y las vías de administración adecuadas es buena ciencia y contribuye al bienestar animal.

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Investigación

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Simple y eficaz administración y visualización de micropartículas en el sistema circulatorio de peces pequeños con inyección de riñón

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Sujeción manual y de las rutas de la administración del compuesto en ratones y ratas

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