Name: Los hidrogeles de alginato para la cultura del órgano en tres dimensiones de los ovarios y oviductos (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-06-20T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 13 s
Description: Aprende a cultivar células epiteliales ováricas y oviductales en hidrogeles de alginato tridimensionales. Este método permite estudiar los eventos tempranos en la formación del cáncer de ovario manteniendo la arquitectura celular nativa.

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Este trabajo fue apoyado por el Fondo de Investigación del Cáncer de ovario [conceder LT/UIC/01.2011], el Centro para la Ciencia UIC clínica y traslacional, el Centro de Cáncer de la UIC, y los Institutos Nacionales de Salud de subvención C06RR15482. Los experimentos con animales se realizaron de acuerdo con las directrices y normas establecidas por AAALAC en los protocolos aprobados por el cuidado de animales por el Cuidado de Animales y el empleo en la UIC. Los animales de este proyecto se encuentran en las salas de barrera en el Laboratorio de Biología de Recursos (BRL) de la Universidad de Illinois en Chicago. El BRL cuenta con un personal totalmente veterinario que supervisa los animales por lo menos dos veces al día y ofrece asesoramiento sobre cuidado de los animales.

1. La disección de ovario y el aislamiento de los tejidos <ol><li> Prepare una solución al 0,5% (w / v) de alginato de sodio, de preparar una versión modificada del protocolo descrito previamente 5, con PBS estéril y calentar a 37 º C. Mezclar por inversión o de rock, pero no del vórtice. Dibujar el alginato en una jeringuilla de 1 ml con una aguja de 25 G y mantener a 37 ° C. </li><li> Prepare 10 mM estéril solución de CaCl2 para la reticulación del alginato en la encapsulación de tejido y calentar a 37 º C. </li><li> Prepare 1 ml de medio de cultivo (αMEM + 5 unidades de penicilina y estreptomicina 5 mg / ml) por pocillo en una placa de 24 pocillos para cada experimento. Incluyen diversos fármacos, péptidos, o virus en el medio de cultivo. Para la transfección antes de la encapsulación de órganos, los tejidos se incuba con Lipofectamine 2000 y el ADN del plásmido durante cuatro horas a 37 º C. </li><li> Diseccionar los órganos del animal, eliminar o quitar cualquier grasa o tejido residual, tire suavemente de la membrana que rodea la bursa del ovario, y cortar los ovarios o el oviducto en cuatro pedazos por que atraviesa el órgano. Los animales fueron sacrificados por asfixia de CO 2 seguido por dislocación cervical. Para el oviducto, desenrollar suavemente el tejido tirando de las membranas de conexión y ampliación de los extremos del tubo en sentido contrario el uso de fórceps antes de cortar. </li><li> Coloque una gota de alginato solo (l ~ 1-3) en una malla de fibra de esterilización. </li><li> Con unas pinzas estériles, mover una pieza de órgano en la gota de alginato y el centro de la gota uso de fórceps o una aguja estéril. </li><li> Invertir la gota que contiene la pieza de órgano (organoide), tome el malla de fibra con pinzas estériles y se vuelve boca abajo para que la gravedad de la fuerza del alginato en una gota. </li><li> Toque la pinza en el borde de un plato de Petri que contiene 10 mM de 10 cm de CaCl2 solución para que la gota cae en la solución. </li><li> Incubar durante 2 minutos, retire con una cuchara estéril que contiene poros para el lanzamiento adicional de CaCl 2 10 mM, y la transferencia al medio de cultivo. Hasta cuatro geles de alginato se pueden transferir a un solo pozo de una placa de 24 pocillos que contienen el medio de cultivo. Cultura por un periodo de tiempo definido. </li></ol> 2. La degradación de alginato y la recolección de las células <ol><li> Para la solubilización del gel de alginato, se incuban los cultivos en alginato liasa (3,4 mg / ml) disuelto en L-15 de Leibovitz medios de comunicación a 37 ° C durante 30 minutos o hasta que el gel esté completamente disuelta. </li><li> Eliminar el tejido de la liasa de alginato. </li><li> Para la recogida de la OSE, se incuban los organoides con 500 unidades de la colagenasa en el L-15 de Leibovitz medios de comunicación durante 1 hora 8. Vortex en dos pulsos segundo (2 segundos y 2 segundos vórtice resto) a una potencia media durante 1 minuto, seguido por un segundo pulso (1 segundo vórtice y un segundos de descanso) durante 1 minuto. Deje que las piezas caen al fondo del órgano de tubo de microcentrífuga y el sobrenadante de la pipeta en un tubo nuevo de microcentrífuga estéril. Centrifugar 3 minutos a 3000 rpm en el epitelio superficial del ovario de pellets. </li><li> Para la recogida del epitelio de las trompas, cortar el tubo a lo largo y lugar en el plástico de cultivo de tejidos en DMEM con 5 unidades de penicilina y 5 mg / ml de estreptomicina y 4% (v / v) de SFB. Durante 3-5 días, las células se "arrastre" de la estroma de trompas y crecer en cultivo de tejidos plastic9. </li></ol> 3. La fijación de las culturas de alginato de órganos encapsulados para cortes de parafina <ol><li> Recoger el alginato encapsulado de cuentas del medio de cultivo en el punto de tiempo seleccionado. </li><li> Recrosslink el alginato para endurecer el gel por la caída de la cultura en el estéril de CaCl2 10 mM solución de dos minutos. </li><li> Fijar el órgano encapsulado en alginato paraformaldehído al 2% que contiene 50 mM de sacarosa, CaCl2 10 mM y 50 mM cacodilato de sodio para asegurar que el gel se mantiene sólido y totalmente encapsula los tejidos durante la fijación. </li><li> Después de procesamiento de tejidos, integrar todo el alginato encapsulado pieza cultivo de órganos en parafina y sección con un microtomo para generar secciones de 5 micras. </li><li> El alginato se disolverá y se retira de la diapositiva si se realiza inmunohistoquímica debido al calor de recuperación de antígeno base. El alginato se mantendrá y manchas de eosina en pie hematoxilina y eosina. </li></ol> 4. Los resultados representativos: Un ejemplo de una cultura del órgano en tres dimensiones del ovario y el oviducto se muestra en la Figura 1. Los ovarios se pueden cortar en trozos de diferente tamaño, y OSE proliferar y migrar a la reparación de la superficie que resultó herido de la incisión con el bisturí. Durante este proceso, la orientación correcta de la OSE en relación con el estroma subyacente se mantiene, con la OSE encapsular el ovario. Como se muestra en la Figura 2, la OSE de los ovarios reduce a la mitad encapsular el ovario de forma más completa, en comparación con los ovarios cortadas en cuartos u octavos. La reparación de las heridas de los ovariosla superficie puede ser estudiado en el contexto de todo el ovario y puede arrojar luz sobre cómo reparar la ovulación y la superficie del ovario induce la transformación de la superficie. El objetivo del experimento depende de la información que se requiera. La arquitectura del tejido, la morfología celular, y las tasas de crecimiento de las células son fácilmente controlables con los cortes de parafina. Por ejemplo, una sola capa de epitelio ovárico superficie se observa después de un cultivo en el suero libre αMEM durante 7 días (Figura 3), mientras que la adición de 5 mg / ml de insulina por 7 días induce hiperproliferación del epitelio superficial del ovario y la formación de múltiples capas de las células (Figura 3B). Mediante la adición de bromodesoxiuridina a los cultivos a una concentración final de 10 mM de 24 horas antes de la fijación, la proliferación de las células se puede medir (3A y 3B recuadro). De cultivos mantenidos en el suero libre αMEM, aproximadamente el 3-5% de OSE someterse a la proliferación durante el período de etiquetado de 24 horas (3A recuadro), mientras que un porcentaje mayor de la proliferación de células de la granulosa. Además de la insulina a la cultura de los medios de comunicación aumenta el porcentaje de la proliferación de OSE a aproximadamente el 30% del total de OSE (3B recuadro). Inmunofluorescencia de la proteína verde fluorescente (GFP) se pueden visualizar a través del gel de alginato con el microscopio estándar después de la transfección de cDNA (Figura 3C). Si bien la cultura proporciona alginato de órganos para el crecimiento y el análisis de la superficie de epitelio ovárico y los folículos primarios, cabe señalar que los folículos maduros, secundarios no llegan a sobrevivir en este sistema de cultivo (Figura 3D). Cultura de los folículos individuales a la madurez dentro de una matriz de hidrogel de alginato se ha descrito en otra parte 10. Alteraciones en la proteína o ARN puede ser analizada desde el órgano completo o de tipos específicos de células con la degradación enzimática (Figura 4). El tratamiento de organoides de ovario cultivadas con colagenasa deja el estroma subyacente intacto (Figura 4 C) al tiempo que permite el enriquecimiento de OSE en el sedimento celular obtenido tras el tratamiento, aunque algunas células del estroma son aislados (Figura 4). <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/2804/2804fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Ovario ratón tridimensional sistema de cultivo utilizado para propagar OSE después de la herida. A) Bajo el microscopio, la bolsa y la almohadilla de grasa alrededor se han eliminado. B) ovarios intactos (O) con el tubo del oviducto (T) y la almohadilla de grasa (F). C) Ovario con bolsa y la almohadilla de grasa extraída (izquierda) y desenrolló el oviducto (derecha). D) organoides ovario o del oviducto se colocaron en una gota de alginato. E) organoides alginato encerrado se deja caer en un entrecruzamiento solución de CaCl2 el alginato para formar un gel. F) El alginato encapsulado organoide de ovario. G) alginato encapsulado organoide oviducto. H) organoides alginato encapsulado incubadas en medio de cultivo. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/2804/2804fig2.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Superficie regenerada por la superficie del ovario mide por citoqueratina 8. La encapsulación de los organoides de ovario por la OSE tras ser cortadas en cuartos octavos, y mitades, cultivadas en un medio de BSA, y se mide por el análisis de inmunohistoquímica con citoqueratina 8 (CK8) de anticuerpos. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/2804/2804fig3.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Sistema de cultivo de alginato permite el paso de los factores de crecimiento y de la transfección de cDNA en el entorno de sistema operativo, pero no es compatible con un rápido crecimiento y maduración de los folículos. A) organoide ovario cultivadas durante 7 días en medio de base para analizar CK8 expresión, que marca el OSE. Sección de inserción, serial manchados de incorporación de BrdU. B) la adición de insulina al medio de cultivo induce hiperplasia de la OSE. Sección de inserción, serial manchados de incorporación de BrdU. C) organoide ovario transfectadas con cDNA de expresar las buenas prácticas agrarias. D) Sistema de alginato de la cultura apoya el crecimiento de folículos primordiales (rojo punta de flecha), pero no folículos secundarios maduros (flecha negro). <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/2804/2804fig4.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. OSE puede ser aislado de la cultura siguiente análisis. A) organoide cultivaron en un medio para un máximo de 2 semanas. B) organoide encapsulado se trata con alginato liasa dejar organoide intacto. Ovario se tiñe con CK8 para marcar OSE. C) organoide es tratada con colagenasa a OSE separado del estroma subyacente. Pieza restante tejido teñido con CK8 para destacar la eliminación de la superficie del ovario. D) las células obtenidas después del tratamiento se enriquecen de OSE como manchas de CK8 (rojo). Las células son contrastados con DAPI para marcar los núcleos.

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</ol>

No hay nada que revelar.

El desarrollo de un sistema de órganos en tres dimensiones utilizando los hidrogeles de alginato de la cultura representa un método versátil para el análisis de muchos tipos diferentes de tejidos a partir de una amplia variedad de organismos. El uso de cultivos en 3D se puede extender a los campos de la ingeniería de tejidos y medicina regenerativa, ya que proporciona un andamio en el que las células pueden crecer 11. En la actualidad, nuestro laboratorio está pasando por los estudios iniciales con los ovario...

<table border="1"><tbody><tr><th> Nombre del reactivo </th><th> Empresa </th><th> Número de catálogo </th><th> Comentarios (opcional) </th></tr><tr><td> Leibovitz medio L-15 </td><td> Gibco </td><td> 11415 </td><td></td></tr><tr><td> αMEM medio </td><td> Gibco </td><td> 12000-022 </td><td></td></tr><tr><td> Alginato de sodio </td><td> NovaMatrix </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Cacodilato de sodio </td><td> Sigma Aldrich </td><td> C0250 </td><td></td></tr><tr><td> Malla de polipropileno de fibra </td><td> McMaster Carr </td><td></td><td> 45 &quot;rollo de ancho; 0,0041&quot; apertura </td></tr><tr><td> Lipofectamine 2000 </td><td> Invitrogen </td><td> 11668 </td><td></td></tr><tr><td> Penicilina / estreptomicina </td><td> Gibco </td><td> 15070-063 </td><td></td></tr><tr><td> Alginato liasa </td><td> Sigma Aldrich </td><td> A1603 </td><td></td></tr><tr><td> A1603 </td><td> Sigma Aldrich </td><td> C9697 </td><td> De Clostridium histolyticum </td></tr><tr><td> Albúmina de suero bovino </td><td> MP Biomedicals </td><td> 103700 </td><td></td></tr><tr><td> De suero fetal bovino </td><td> Gibco </td><td> Gibco </td><td></td></tr><tr><td> SU solución </td><td> Roche </td><td> 11074547001 </td><td> Insulina / transferrina / selenito de sodio </td></tr><tr><td> Citoqueratina 8 de anticuerpos </td><td> Estudios del Desarrollo del Banco hibridoma </td><td> TROMA-1 </td><td> El uso de 1:200 </td></tr><tr><td> DAPI </td><td> Vector de Laboratorios </td><td> H1200 </td><td></td></tr><tr><td> Bromodeoxyuridine </td><td> Sigma </td><td> B50002-1G </td><td> Concentración final de 10 M </td></tr></tbody></table>

los hidrogeles de alginato para la cultura del órgano en tres dimensiones de los ovarios y oviductos

Alginate Hydrogels for Three-Dimensional Organ Culture of Ovaries and Oviducts

El cáncer de ovario es la quinta causa principal de muerte por cáncer en las mujeres y tiene una tasa de mortalidad del 63% en los Estados Unidos 1. El tipo de célula de origen de los cánceres de ovario sigue siendo en cuestión y podría ser el epitelio superficial del ovario (OSE) y del epitelio distal de la trompa de Falopio fimbrias 2,3. El cultivo de las células normales como cultivo primario in vitro permitirá a los científicos para modelar los cambios específicos que podrían conducir al cáncer de ovario en el epitelio distintas, lo que definitivamente la determinación del tipo de célula de origen. Esto permitirá el desarrollo de marcadores biológicos más precisos, los modelos animales con cambios en los tejidos específicos de genes, y mejores estrategias de prevención dirigidas a esta enfermedad. El mantenimiento de las células normales en los hidrogeles de alginato promueve a corto plazo en el cultivo in vitro de las células en sus tres dimensiones contexto y permite la introducción de ADN plásmido, siRNA, y moléculas pequeñas. Por los órganos de cultivo en las piezas que se derivan de los cortes estratégicos utilizando un bisturí culturas, varios de un solo órgano se pueden generar, aumentar el número de experimentos de un solo animal. Estos recortes aspectos el modelo de la ovulación que conduce a la proliferación de la OSE, que se asocia con la formación de cáncer de ovario. Tipos de células, como el entorno de sistema operativo que no crecen bien en superficies de plástico pueden ser cultivadas con este método y facilitar la investigación sobre los procesos celulares normales o los primeros eventos en la formación del cáncer 4. Hidrogeles de alginato se pueden utilizar para apoyar el crecimiento de muchos tipos de tejidos 5. El alginato es un polisacárido lineal compuesto por unidades repetidas de β-D-manurónico ácido y α-L-gulurónico ácido que puede ser reticulado con iones de calcio, lo que resulta en una acción gelificante suave que no dañan los tejidos 6,7. Al igual que otras matrices tridimensionales de cultivo celular como Matrigel, alginato proporciona soporte mecánico para los tejidos, sin embargo, las proteínas no son reactivos con la matriz de alginato, y por eso funciona como una matriz de alginato de síntesis extracelular que no inicia la señalización celular 5. El hidrogel de alginato flota en el medio de cultivo celular estándar y compatible con la arquitectura del crecimiento de los tejidos in vitro. Se presenta un método para la preparación, la separación, y la inclusión de ovario y el oviducto pedazos de órganos en los hidrogeles de alginato, que pueden mantenerse en cultivo durante un máximo de dos semanas. La liberación enzimática de las células para el análisis de proteínas y RNA de muestras de la cultura de órganos también se describe. Finalmente, el crecimiento de tipos de células primarias es posible sin la inmortalización genética de ratones y permite a los investigadores a utilizar por nocaut y en ratones transgénicos.

Cultivo de células normales en sus tres dimensiones contexto representa un método alternativo para estudiar los primeros eventos necesarios para la transformación celular y tumorigénesis. Este método se utiliza para producir los ovarios normales y las células del oviducto para estudiar los eventos tempranos en la formación de cáncer de ovario.

Los hidrogeles de alginato para la cultura del órgano en tres dimensiones de los ovarios y oviductos

El cáncer de ovario es la quinta causa principal de muertes por cáncer en mujeres y presenta una tasa de mortalidad del 63 % en los Estados Unidos1. El tipo celular de origen para...

Este procedimiento describe la propagación de células epiteliales ováricas y de las trompas de Falopio normales como un cultivo de órganos tridimensional. Primero, diseque la almohadilla de grasa del ovario, del conducto deferente y una parte del útero de un ratón. Luego, elimine la bursa y separe las membranas del conducto deferente con un par de pinzas, y corte cada ovario o conducto deferente en dos a cuatro fragmentos denominados organoides.Finalmente, encapsule el organoide en una gota de alginato sobre un trozo de fibra de malla. Dado que las OSC y las TEC cultivadas en medios definidos conservan las características normales de las células en su arquitectura tridimensional nativa, la inmunohistoquímica en secciones de tejido, el análisis de ARN y el análisis de proteínas pueden proporcionar información sobre el impacto de las OSC y las TEC en el cáncer de ovario.La principal ventaja de esta técnica en comparación con el cultivo celular inmortalizado tradicional bidimensional es que las células pueden crecer en contacto con la matriz extracelular subyacente y con células estromales, sin necesidad de inmortalización genética que podría alterar las vías celulares. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo del cáncer ovárico, como definir los eventos iniciales en la formación del cáncer y determinar a partir de qué tipo celular surgen los cánceres ováricos serosos. Aunque este método puede proporcionar información sobre el cáncer ovárico, también puede aplicarse a otros sistemas, como el cultivo de folículos ováricos y el cultivo de islotes pancreáticos beta.Por lo general, las personas nuevas en este método tendrán dificultades porque la eliminación de las membranas bursales y uc sin dañar los ovarios y el UCT es un procedimiento complicado. Primero, prepare una solución al 0,5 % de alginato en PBS estéril y caliente a 37 grados Celsius, mezclando por inversión o agitación suave. Luego aspire el alginato en una jeringa de un mililitro con una aguja de calibre 25 y mantenga a 37 grados Celsius.A continuación, prepare una solución de cloruro de calcio 10 milimolar para la reticulación del alginato tras la encapsulación del tejido y caliente a 37 grados Celsius. Asimismo, prepare un mililitro de medio de cultivo por pocillo en una placa de 24 pocillos para cada experimento, que incluirá diversas drogas, péptidos o virus en el medio de cultivo. Al diseccionar los órganos del animal, retire cualquier grasa o tejido residual.Retire suavemente la membrana de bursa que rodea el ovario y corte el ovario o el CUT en cuatro piezas dividiendo el órgano por la mitad para desenrollar suavemente el tejido del oviducto. Separe las membranas conectivas y extienda los extremos del tubo en direcciones opuestas. Utilizando pinzas.Antes de cortar, coloque una sola gota de alginato de aproximadamente dos microlitros sobre una fibra de malla esterilizada. Utilizando fórceps estériles, coloque un fragmento de órgano en la gota de alginato y centre la gota para invertirla con el organoide incluido. Gire la fibra de malla e invierta la malla para permitir que la gravedad impulse el alginato hacia una gota colgante en el borde de una placa de Petri de 10 centímetros que contiene solución de cloruro de calcio 10 milimolar.Toque la pinza para que la gota caiga en la solución. Incube durante dos minutos. Retire con una cuchara estéril que contenga poros para liberar el exceso de cloruro de calcio 10 milimolar y transfiera al medio de cultivo durante un período de tiempo definido.Para la solubilización del gel de alginato, incubar los cultivos en 3,4 miligramos por mililitro. Alginate lyase disuelta en ovitz es L 15. Medio a 37 grados Celsius durante 30 minutos o hasta que el gel se disuelva completamente.Luego, retire el tejido de la alginato liasa. Ahora, para recolectar el OSE, incube el organoide con 500 unidades de colagenasa en medio ovitz ISS. L 15 durante una hora, luego vortex en pulsos de dos segundos a potencia media durante un minuto, seguido de un segundo.Aplicar pulsos durante un minuto. Dejar que los fragmentos del órgano sedimenten en el fondo del tubo de microcentrífuga y pipetear el sobrenadante a un tubo de microcentrífuga estéril nuevo. Centrifugar durante tres minutos a 3000 RPM para obtener un sedimento del epitelio de la superficie ovárica. Finalmente, para recolectar el epitelio tubárico, cortar el tubo longitudinalmente y colocarlo sobre plástico para cultivo de tejidos durante tres a cinco días.Las células saldrán del estroma tubárico y crecerán sobre el plástico para cultivo de tejidos. Recolecte la perla encapsulada en alginato del medio de cultivo en el punto de tiempo seleccionado. Vincule el alginato para endurecer el gel dejando caer la muestra en una solución estéril de cloruro de calcio 10 milimolar durante dos minutos.Ahora, fije el órgano encapsulado en alginato asegurando que el gel permanezca sólido y encapsule completamente el tejido durante la fijación. Pueden cultivarse tipos celulares como las OSC que no crecen bien sobre superficies de plástico. Mediante este método se facilita la investigación de los procesos celulares normales o de los eventos iniciales en la formación del cáncer.Bajo el microscopio, se retiraron la bursa y la almohadilla grasa circundante, y se procesaron para obtener organoides encapsulados en alginato que se incubaron en medio de cultivo. Las CCO repararon la superficie lesionada por la incisión con el bisturí en función del tiempo y la distancia.El análisis inmunohistoquímico mediante un anticuerpo contra la citoqueratina 8 indica que los ovarios cortados por la mitad encapsulan al ovario de manera más completa en comparación con los ovarios cortados en cuartos u octavos. La arquitectura tisular, la morfología celular y las tasas específicas de crecimiento celular se pueden monitorear fácilmente mediante secciones de parafina. Por ejemplo, se observa una sola capa de epitelio superficial ovárico tras cultivar durante siete días en MEM sin suero.Aunque la adición de cinco microgramos por mililitro de insulina durante siete días induce una hiperproliferación del epitelio superficial ovárico y la formación de múltiples capas de células. Aquí, la inmunofluorescencia de la proteína verde fluorescente se visualiza a través del gel de alginato mediante microscopía convencional tras la transfección de ADNc. Aunque el cultivo orgánico en alginato permite el crecimiento y análisis del epitelio superficial ovárico y de los folículos primarios, debe tenerse en cuenta que los folículos secundarios maduros no sobreviven en este sistema de cultivo.Las alteraciones en proteínas o ARN pueden analizarse a partir de todo el órgano o de tipos celulares específicos mediante degradación enzimática. El tratamiento de organoides ováricos cultivados con colagenasa deja intacto el estroma subyacente, permitiendo al mismo tiempo el enriquecimiento del epitelio de superficie ovárico en el pellet celular obtenido tras el tratamiento. Esta técnica puede realizarse en una a dos horas si se lleva a cabo adecuadamente.Al realizar este procedimiento, es importante recordar mantener la esterilidad en todo momento. Tras seguir este procedimiento, se pueden realizar métodos adicionales, como inmunohistoquímica, transferencia western y matrices de transcripción, para responder preguntas adicionales, como cómo la morfología celular y la arquitectura del tejido contribuyen a los eventos transformadores iniciales. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo realizar el cultivo tridimensional en alginato de ovario y oviducto.

alginate-hydrogels-for-three-dimensional-organ-culture-ovaries

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Bioengineering

Bioingeniería

Un nuevo método para la encapsulación de los folículos ováricos en 3D de fibrina-alginato red interpenetrante se describe. Este sistema combina un soporte estructural a la degradación proteolítica de apoyar el desarrollo de folículos inmaduros para producir ovocitos maduros. Este método puede ser aplicado a los agregados de cultivo celular para mantener contactos célula-célula, sin limitar la expansión.

Un método para la encapsulación de los folículos ováricos y la Cultura en un proteolíticamente degradables tres dimensiones del sistema

Este video describe los protocolos para encapsular complejos de cúmulos-ovocitos porcinos (COC) en perlas de fibrina-alginato para establecer un cultivo 3D. Este sistema de maduración in vitro mantiene la comunicación normal de célula a célula, asegurando la maduración de los ovocitos y conservando la viabilidad.

Cultivo 3D de COC porcinos: un procedimiento para encapsular complejos de ovocitos cúmulos en perlas de hidrogel polimérico de fibrina-alginato

Este protocolo describe el cultivo primario / co-cultivo de tejido ovárico ratón, utilizando los ovarios de ratones recién nacidos y los folículos ováricos individuales de ratones prepúberes. Las técnicas de cultivo de apoyar el desarrollo de una manera altamente fisiológica, lo que permite la investigación del efecto de los agentes extrínsecos en el ovario, y de las interacciones entre los folículos ováricos.

Cultura y Co-cultura de ratón ovarios y los folículos ováricos

Aquí presentamos una adaptación de la pasivo claridad y método de la reconstrucción 3D para la visualización de la vasculatura ovárica y foliculares capilares en ovarios de ratón intacto.

Reconstrucción tridimensional de la arquitectura Vascular del ovario de ratón pasivo claridad-despejado

Aquí se presentan dos protocolos para la encapsulación de ovocitos porcinos en condiciones de cultivo 3D. En el primero, los complejos cúmulos-oocitos (COC) se encapsulan en perlas de fibrina-alginato. En el segundo, se encierran con partículas fluoradas de etileno propileno propileno (microbiorreos). Ambos sistemas garantizan condiciones óptimas para mantener su organización 3D.

Hidrogeles de Alginato degradados proteolíticamente y microbiorreactores hidrófobos para encapsulación de oocitos porcinos

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Establecimiento de organoides endometriales 3D a partir del útero del ratón

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Organoides del epitelio de la superficie del ovario humano como plataforma para estudiar la regeneración de tejidos

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Aplicación de un nuevo hidrogel de hialuronano para el cultivo tridimensional de folículos y metodología para la criopreservación de folículos ováricos de ratón

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Describimos métodos para aislar células somáticas ováricas de ratón a partir de una fracción del ovario enriquecida con estroma y para generar organoides somáticos ováricos de ratón utilizando un enfoque sin andamiaje.

Investigación del microambiente ovárico: métodos para aislamiento, cultivo 2D y cultivo organoide de células somáticas ováricas de ratón

Aprende a cultivar células epiteliales ováricas y oviductales en hidrogeles de alginato tridimensionales. Este método permite estudiar los eventos tempranos en la formación del cáncer de ovario manteniendo la arquitectura celular nativa.

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