Purificación de péptidos: una técnica basada en RP-HPLC para extraer péptidos de lisados de proteínas digeridas

0 vistas3:21 min • April 30th, 2023

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Para aislar y purificar los péptidos, comience con una suspensión de lisado de proteínas que contenga una mezcla de péptidos digeridos.

Trate la mezcla con ácido trifluoroacético o reactivo a base de TFA. Este reactivo aniónico o cargado negativamente forma un complejo de pares de iones con residuos básicos o cargados positivamente en los péptidos, enmascarando así su carga y mejorando la hidrofobicidad peptídica.

Ahora, ensamble una columna de cromatografía líquida de alta resolución de fase inversa, o RP-HPLC, que contenga una fase estacionaria porosa a base de sílice, inmovilizada con ligandos hidrofóbicos no polares. Agregue un tampón de equilibrio compatible con péptidos a la columna para preparar la fase estacionaria antes de la aplicación de la muestra.

Ahora, cargue la muestra acidificada en la columna. Dentro de la columna, los péptidos hidrofóbicos se adsorben selectivamente a los ligandos hidrofóbicos de la fase estacionaria. Pase un tampón de lavado a través de la columna para eluir cualquier partícula no unida o no deseada.

A continuación, pase un tampón de elución orgánica menos polar, con alta hidrofobicidad, a través de la columna. Debido a su afinidad selectiva hacia el tampón de elución, los péptidos unidos se desorben de la matriz de la columna.

Recoja el eluido que contiene péptidos de la columna. Liofilizar el eluido para eliminar el contenido de agua y obtener un polvo seco de péptidos puros y estables.

Para acidificar la muestra, agregue aproximadamente 20 microlitros de ácido trifluoroacético al 5%, o TFA, por mililitro de lisado. Mezcle bien el tubo y use una tira de pH para medir el pH. Si es necesario, agregue un 5% adicional de TFA para ajustar el pH a 2.5. A continuación, conecte al extremo más corto de una columna C18 a un colector de vacío. Después de ajustar el vacío entre 17 y 34 kPa, utilice 3 mililitros de acetonitrilo al 100% y una pipeta de vidrio para humedecer la columna.

Equilibre la columna utilizando una pipeta de vidrio y aplicando dos alícuotas de 3 mililitros de TFA al 0,1%. Luego, cargue la muestra acidificada en la columna. Use tres volúmenes de 3 mililitros de TFA al 0,1% para lavar la columna. Luego, aplique 2 mililitros de 40% de ACN, 0.1% de TFA para eluir la muestra y recolecte dos fracciones de 2 mililitros en tubos de cultivo de vidrio. Con parafilm, cubra los tubos de eluido y use una aguja de calibre 20 para perforar de tres a cinco agujeros en la cubierta antes de liofilizar las muestras durante la noche.

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Última actualización: 22 agosto 2026