Aislamiento de células mononucleares Lamina Propria: una técnica de centrifugación en gradiente de densidad basada en sílice para obtener células mononucleares a partir del colon murino

0 vistas5:01 min • April 30th, 2023

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La lámina propia intestinal, ubicada debajo del epitelio intestinal, consiste en tejido conectivo suelto junto con una densa red de fibras de colágeno que contienen una amplia gama de células como fibroblastos, células mononucleares, incluidos linfocitos y monocitos. Estas células juegan un papel crucial en el mantenimiento de la homeostasis.

Para aislar células mononucleares, comience tomando fragmentos de colon de ratón. Trate los fragmentos con un tampón de digestión que contenga enzimas colagenasa. Las enzimas colagenasas digieren las fibras de colágeno dentro del tejido, liberando las células en suspensión.

Recoja el sobrenadante y fíltrelo a través de filtros celulares para eliminar el tejido no digerido y los desechos y obtener una suspensión unicelular. Agregue un tampón frío al filtrado para inactivar las enzimas colagenasa.

Centrifugar para separar las células. Deseche el sobrenadante que contiene las enzimas y vuelva a suspender el sedimento celular en un medio de separación a base de sílice de baja densidad. A continuación, coloque la suspensión sobre un medio de separación a base de sílice de alta densidad para crear un gradiente de separación.

Centrifugar la mezcla. Las células mononucleares sedimentan y forman una capa blanca en la interfaz entre las capas de gradiente de densidad. Transfiera con cuidado la capa de interfaz blanca a un tubo nuevo que contenga un tampón adecuado.

Centrífuga para obtener un pellet que contiene células mononucleares purificadas. Vuelva a suspender el pellet en el tampón para un análisis posterior posterior.

Para comenzar, agregue 20 mililitros de tampón de digestión de colagenasa al tubo que contiene los fragmentos de colon lavados. Selle el tubo y colóquelo en un agitador orbital a 37 grados Celsius con una velocidad de rotación de 2 x g durante 60 minutos. Asegúrese de que los fragmentos de tejido estén en constante movimiento durante la agitación.

Vierta 5 mililitros de medios de separación de densidad a base de sílice al 66% en cada uno de los tres tubos separados de polipropileno de 15 mililitros. A continuación, utilice una pipeta serológica de 25 mililitros para recoger solo el sobrenadante de la digestión de colagenasa 1. Filtre el sobrenadante a través de un colador de celda de tela de filtración de poros de 40 microlitros colocado en un tubo cónico limpio de polipropileno de 50 mililitros. Llene el tubo completamente con tampón de colon frío para apagar el tampón de digestión de colagenasa. Luego, gire las células, aspire el sobrenadante y mantenga el gránulo en hielo.

Continúe realizando la digestión de colagenasa 2 como se describe en el protocolo de texto. Después de completar la digestión de colagenasa 2, enjuague los fragmentos de tejido vigorosamente hacia adelante y hacia atrás entre el tubo y una jeringa de 10 mililitros a través de una aguja roma de 18G. Repita esta descarga durante al menos siete u ocho pasajes, continuando hasta que no se vean fragmentos de tejido grueso o escombros.

A continuación, pase la suspensión de desagregación tisular a través de un colador de células de tela de filtración de poros de 40 micrómetros colocado en un tubo limpio de polipropileno de 50 mililitros. Llene el tubo hasta el borde con tampón de colon frío para enfriar la digestión y centrifugar a 800 x g y a 4 grados centígrados durante 5 minutos.

Deseche el sobrenadante mediante aspiración endouterina y tire del gránulo resuspendido de la digestión de colagenasa 1 a su tubo correspondiente. Después de esto, vuelva a suspender cada gránulo en 24 mililitros de medios de separación de densidad a base de sílice al 44% por colon. Utilice una pipeta serológica de 10 mililitros para colocar lentamente 8 mililitros de este medio en cada uno de los tres tubos que contienen un 66 % de medios de separación de densidad a base de sílice.

Equilibre cuidadosamente los tubos dentro de los cubos de centrífuga con una báscula o una balanza. Centrifugar a 859 x g y a 20 grados centígrados durante 20 minutos sin descanso. Deje que los rotores se detengan por completo antes de retirar los tubos, teniendo cuidado de no interrumpir las celdas en la interfaz de gradiente.

Visualice la interfaz de gradiente cerca de la marca de 5 mililitros, donde normalmente hay una banda blanca de 1-2 milímetros de espesor. Aspire al vacío y deseche los 7 mililitros superiores del gradiente para permitir un acceso más fácil de la pipeta a la interfaz. Usando succión manual continua y movimiento giratorio constante de la muñeca, recolecte la capa de interfaz de las células. Recolecte hasta que la interfaz entre los dos gradientes sea clara y refractaria, y transfiera la interfaz a un nuevo tubo cónico de polipropileno de 50 mililitros.

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Última actualización: 15 agosto 2026