Extracción de vesículas extracelulares: una técnica para aislar vesículas extracelulares de muestras de tejido completo mediante centrifugación diferencial

0 vistas4:13 min • April 30th, 2023

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En tejidos completos, las células liberan vesículas extracelulares o VE en el líquido intersticial. Estos incluyen cuerpos apoptóticos, microvesículas y exosomas. Los EV juegan un papel importante en el mantenimiento de la comunicación de célula a célula.

Para extraer EV, comience tomando una muestra de tejido completo.

Tratar el tejido con un tampón de disociación adecuado. Los componentes del tampón de disociación desintegran la matriz extracelular presente en el tejido, lo que eventualmente afloja las células.

Transfiera la suspensión a un homogeneizador y altere mecánicamente el tejido aún más para disociarlo y liberar las células.

A continuación, centrifuga el homogeneizado a baja velocidad para peletizar las células y los fragmentos de tejido mientras los VE permanecen en el sobrenadante.

Tome el sobrenadante en un tubo nuevo. Centrifugar a alta velocidad para peletizar la mayoría de los cuerpos apoptóticos de mayor tamaño, dejando los VE de menor tamaño en el sobrenadante.

Recoja el sobrenadante que contiene EV en una jeringa. Filtre los componentes para eliminar los cuerpos apoptóticos restantes y recolectar la población de vehículos eléctricos de pequeño tamaño.

Centrifugar el filtrado para obtener los EV en el pellet. Deseche el tampón restante y vuelva a suspender el gránulo EV en una solución de sacarosa. Esta solución crea un entorno isotónico para que los VE conserven su morfología.

Ahora, guarde la suspensión EV a cuatro grados centígrados hasta que se siga usando.

Para comenzar, prepare 10 mililitros de tampón de disociación en Hibernate-E Medium por cada 0,4 a 1,0 gramo de tejido. Agregue tejido entero fresco o congelado al tampón en un tubo de 50 mililitros e incube en un baño de agua tibia a 37 grados centígrados durante 20 minutos.

Después de esto, agregue inhibidores de proteasa y fosfatasa para una concentración final de 1x en el tampón de disociación. Vierta la solución con el pañuelo en un homogeneizador Dounce holgado. Use aproximadamente 30 movimientos lentos por muestra para disociar suavemente el tejido.

Luego, transfiera el tejido disociado y la solución tampón a un tubo cónico de 50 mililitros. Centrifugar a 500 x g y a 4 grados centígrados durante 5 minutos para granular las células y los fragmentos de tejido fibroso o cohesivo restantes.

Transfiera los sobrenadantes a un tubo cónico limpio de 50 mililitros y centrifugue a 2.000 x g y a 4 grados centígrados durante 10 minutos para granular y desechar los desechos celulares grandes.

Transfiera este sobrenadante a un tubo cónico limpio de 50 mililitros y centrifugue a 10,000 x g y a 4 grados Celsius durante 40 minutos para granular cualquier vesícula más grande no deseada o cuerpos apoptóticos pequeños. Decanta el sobrenadante a través de un filtro de 0,45 micrómetros en un tubo de ultracentrifugación limpio de 12 mililitros.

A continuación, ultracentrifugar la muestra a 100.000 x g y a 4 grados centígrados durante 2 horas para granular los VE pequeños. Decantar el sobrenadante y dejar los tubos de ultracentrifugación invertidos durante 5 a 10 minutos, golpeando con frecuencia para eliminar cualquier líquido residual en los lados de los tubos.

Luego, vuelva a suspender el gránulo EV en 1,5 mililitros de tampón de sacarosa de 0,25 molares. Cubra los tubos con parafilm y luego divida los vehículos eléctricos en una solución. Agite los tubos de ultracentrífuga durante 15 a 20 minutos a temperatura ambiente y luego vuelva a agitar el vórtice.

Centrifugar brevemente los tubos a una velocidad inferior a 1.000 x g para recuperar la suspensión líquida en el fondo del tubo. Si es necesario, guarde la suspensión a 4 grados centígrados durante la noche.

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Última actualización: 1 agosto 2026