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En condiciones patológicas, la microglía activada, macrófagos cerebrales especializados, ayuda a eliminar patógenos y restos celulares. Estas microglías expresan receptores únicos que las diferencian de otros macrófagos.
Para aislar la microglía, comience con un cultivo de células cerebrales derivadas de pez cebra transgénico, que exprese moléculas fluorescentes específicas en diferentes tipos de células.
El cultivo contiene una mezcla de neuronas, que expresan fluorescencia roja, macrófagos, que expresan fluorescencia verde y microglía no fluorescente.
Ahora, agregue un reactivo de bloqueo e incube el cultivo con agitación intermitente. El reactivo de bloqueo se une a los sitios no específicos de las células y reduce la señal de fondo.
A continuación, agregue anticuerpos primarios e incube. Estos anticuerpos se unen a receptores específicos expresados en la superficie de la microglía.
Centrifugar el cultivo y eliminar el sobrenadante que contiene anticuerpos no unidos. Vuelva a suspender el gránulo celular en un medio fresco.
Posteriormente, agregue anticuerpos secundarios conjugados con colorante fluorescente e incube. Estos anticuerpos se unen a los anticuerpos primarios e imparten un color rojo al complejo microglía-anticuerpo.
Centrifugar el cultivo y eliminar los anticuerpos no unidos. Vuelva a suspender el gránulo en un medio fresco.
Filtra las celdas para eliminar cualquier residuo.
Usando un clasificador de células activadas fluorescentes o FACS, clasifique la población de células de microglía según su tamaño celular y fluorescencia.
La microglía aislada se puede utilizar para otras aplicaciones.
Para inmunoteñir la microglía, use 0,3 mililitros de Media A más NGS al 2% para resuspender el sedimento celular. Luego, divida las células en tres tubos de 1,5 mililitros: uno para células no teñidas para medir la autofluorescencia, otro para medir la unión inespecífica de un anticuerpo secundario a la microglía y un tercero como prueba.
A todos los tubos, agregue un 1% de endotoxinas bajas, sin azida (LEAF) para bloquear las interacciones CD16 / CD32 con el dominio Fc de las inmunoglobulinas. Luego, incube las células durante 10 minutos con agitación suave cada 5 minutos.
A continuación, al tercer tubo, añadir el anticuerpo 4C4 e incubarlo durante 30 minutos con agitación suave cada 10 minutos. Luego, gire los tubos a 300 x g y 4 grados centígrados durante 10 minutos.
Después de desechar el sobrenadante, lave el gránulo una vez con 0,5 mililitros de Media A más 2% de NGS antes de volver a girar los tubos. Vuelva a suspender el sedimento celular con 0,5 mililitros de Media A más 2% de NGS, luego agregue 1% de LEAF e incube las células durante 10 minutos con agitación suave cada 5 minutos.
A los tubos 2 y 3, agregue anticuerpos secundarios y coloque los tubos en la oscuridad. Después de girar los tubos y desechar el sobrenadante, use 0,5 mililitros de Medio A más 2% de NGS para lavar las muestras dos veces, luego vuelva a suspender los gránulos celulares con 1 mililitro de Medio A más 2% de NGS.
Pase la suspensión celular a través de una tapa de filtro celular de 35 micras y transfiérala a tubos FACS fríos de 5 milímetros sobre hielo protegido de la luz. Finalmente, realice la clasificación FACS y la extracción de ARN de acuerdo con el protocolo de texto.