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Los ADN libres de células circulantes o cfDNA son fragmentos cortos de ADN liberados principalmente por células cancerosas que sufren apoptosis. Los cfDNA son biomarcadores de cáncer prometedores y se pueden aislar de fluidos corporales como el plasma.
Para aislar el cfDNA, primero, obtenga una muestra de plasma de un paciente con cáncer. A continuación, trate el plasma con un tampón de lisis que contenga proteinasa K, sales caotrópicas y ARN portador. Las sales caotrópicas desnaturalizan las proteínas, liberando cfDNA unidos a las proteínas. La proteinasa K inactiva las nucleasas, minimizando así la degradación del cfDNA.
A continuación, agregue el búfer de enlace deseado al ejemplo. Ensamble una columna de centrifugación que contenga matriz de sílice en fase sólida en el aparato de vacío. Cargue el ejemplo en la columna. Aplique vacío para pasar la muestra a través de la membrana de sílice.
El ARN portador se une de forma no específica a las paredes del tubo. Esta unión inespecífica junto con la presencia de sales en el tampón facilita la unión del cfDNA a la membrana de sílice, aumentando la recuperación de cfDNA. Las proteínas y otros contaminantes no se retienen en la membrana.
Ahora, coloque la columna de centrifugado en un tubo de recolección. Centrifugar para eliminar cualquier lisado residual. Agregue un tampón de lavado adecuado y centrífugo para eliminar las sales y cualquier contaminante restante de la columna. Finalmente, transfiera la columna a un tubo de recolección nuevo y agregue un tampón de elución adecuado. Centrifugar para eluir los ácidos nucleicos, incluidos los cfDNA, en el tubo.
Para aislar el ADN libre de células circulantes de una muestra de plasma del paciente, agregue 100 microlitros de proteinasa K y 800 microlitros de tampón de lisis suplementados con un microgramo de ARN portador a 1 mililitro de plasma del paciente. Pulse completamente la solución durante 30 segundos antes de incubarla durante 30 minutos a 60 grados centígrados. Al final de la incubación, agregue 1,8 mililitros de tampón de unión al tubo y mezcle bien con 15 a 30 segundos de vórtice de pulso.
Después de una incubación de 5 minutos en hielo, inserte una columna de membrana de sílice en un aparato de vacío conectado a una bomba de vacío e inserte firmemente un extensor de tubo de 20 mililitros en la columna abierta para evitar fugas de muestra. Al final de la incubación, vierta con cuidado la mezcla en el extensor de tubo y encienda la bomba de vacío. Cuando todo el lisado haya pasado completamente por las columnas, apague la bomba de vacío, libere la presión a cero milibares y deseche con cuidado el extensor de tubo sin contaminar las columnas adyacentes.
Transfiera la columna a un tubo de recolección para centrifugar y eliminar cualquier lisado residual. Después de desechar el flujo continuo, agregue 600 microlitros de Wash Buffer-1 a la columna para una segunda centrifugación. Después de desechar el flujo continuo, centrifugar la columna nuevamente con 750 microlitros de Wash Buffer-2. Después de desechar el flujo continuo, agregue 750 microlitros de etanol al 96% al 100% a la columna para una centrifugación adicional.
Transfiera la columna a un nuevo tubo de recolección de 2 mililitros para otra centrifugación antes de colocar el conjunto de la columna de membrana en un nuevo tubo de recolección de 2 mililitros a 56 grados Celsius durante 10 minutos. Al final de la incubación, transfiera la columna a un nuevo tubo de elución de 1,5 mililitros y agregue 50 microlitros de tampón de elución a la columna para una incubación de 3 minutos a temperatura ambiente. A continuación, centrifugar la solución recuperada durante 1 minuto a 20.000 x g para eluir los ácidos nucleicos.