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En la metástasis cerebral, las células cancerosas de otros órganos afectados, o el sitio primario de origen, se diseminan al sistema nervioso central para formar tumores secundarios. Para generar un modelo de metástasis cerebral de ratón, prepare un ratón anestesiado en posición supina. Haga una pequeña incisión en la región del cuello.
Diseccionar los músculos para exponer una de las arterias carótidas subyacentes. Las arterias carótidas son un par de vasos sanguíneos importantes en el cuello que suministran sangre al cerebro y la cabeza. Separe la arteria carótida del nervio vago adyacente. A continuación, coloque nudos de sutura alrededor de los extremos proximal y distal de la arteria.
Apriete el nudo proximal para obstruir el flujo sanguíneo hacia el lugar de la inyección objetivo. Luego, coloque una bola de algodón empapada en tampón debajo del sitio de inyección objetivo para inmovilizar y estirar la arteria para obtener apoyo adicional. Tome una jeringa llena de proteína verde fluorescente o suspensión de células cancerosas marcada con GFP.
Inyecte suavemente la suspensión celular en la luz de la arteria carótida. Retraiga la aguja y apriete el nudo distal para evitar la fuga de células cancerosas. Por último, sutura la incisión. Deje que el mouse se recupere. Con el tiempo, las células cancerosas comienzan a migrar y formar tumores secundarios en el cerebro, lo que confirma el establecimiento exitoso de un modelo de metástasis cerebral.
En este procedimiento, anestesiar al ratón con un cóctel de ketamina / xilacina mediante inyección intraperitoneal. Confirme la anestesia completa pellizcando las patas del animal y observe la falta de respuesta. A continuación, elimine el vello del cuello afeitándose o usando una pequeña cantidad de producto depilatorio.
Luego, coloque el mouse en un plato de vidrio y asegúrelo con bandas elásticas. Limpiar la piel aplicando alcohol al 70% y povidona yodada. Ahora, haga una incisión en la piel de aproximadamente 1 centímetro de largo con un bisturí quirúrgico. Luego, disecciona sin rodeos el músculo con fórceps quirúrgicos para exponer la arteria carótida debajo.
Separe la arteria carótida del nervio vago adyacente con fórceps quirúrgicos. Luego, coloque dos suturas, una distal y la otra proximal a la bola de algodón, y haga nudos sueltos. Apriete el nudo proximal para bloquear el flujo sanguíneo en el lugar de la inyección.
Después de eso, humedezca una pequeña bola de algodón con tampón y colóquela debajo de la arteria carótida del sitio de inyección previsto. Luego, proceda a la inyección de células cancerosas si la arteria carótida de la bola de algodón parece completamente presurizada con sangre roja fresca.
En este paso, coloque un vórtice y extraiga 100 microlitros de células cancerosas en la jeringa. Bajo el microscopio de disección, inserte lentamente la aguja de calibre 31 con bisel hacia arriba en la luz de la arteria carótida que se encuentra encima de la bola de algodón. Inyecte lentamente las células de la jeringa en la arteria carótida.
La inyección exitosa se puede observar por el color cambiante de los vasos sanguíneos y la musculatura cercanos cuando las células cancerosas tamponadas son empujadas hacia la circulación. Cuando se complete la inyección, levante la ligadura distal suavemente para evitar la regurgitación. Luego, apriete rápidamente el nudo distal para completar el proceso de inyección.
Después de completar la inyección, apriete las ligaduras y recorte el exceso de sutura de seda con microtijeras. Mueva hacia atrás el músculo separado para cubrir el sitio de la herida y cierre la piel con dos grapas.
Para la recuperación, transfiera al animal a una almohadilla térmica. Luego, administre buprenorfina mediante inyección subcutánea como analgesia posquirúrgica. Una vez que recupere la conciencia y reanude el comportamiento normal, devuelva el ratón a su ubicación de alojamiento. Proporcione al animal comida en gel durante varios días después de la cirugía.