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Comience tomando una suspensión de células receptoras cultivadas en un tubo. Complemente el tubo con plásmidos inducibles que contengan el gen de interés. La expresión de este gen está bajo el control de una secuencia promotora aguas arriba fusionada con un operador de tetraciclina o TetO, formando un elemento sensible a la tetraciclina o TRE.
Además, agregue vectores reguladores de tetraciclina, cada uno de los cuales contiene un gen que codifica la proteína transactivadora de tetraciclina recombinante o tTA. Electroporar la mezcla de ADN celular para usar pulsos eléctricos para facilitar la absorción de plásmidos por parte de la célula.
Después de la electroporación, coloque las células en placas e incube durante el tiempo deseado. Al entrar en el núcleo, el vector de tetraciclina expresa la proteína tTA. El tTA es una proteína híbrida que contiene un represor de Tet o la fracción TetR y un dominio transactivador de transcripción viral VP16.
La fracción TetR se une a la secuencia TetO del elemento TRE, mientras que el dominio VP16 permite que la ARN polimerasa sintetice el ARNm del ADN aguas abajo, lo que finalmente conduce a la expresión génica. Reemplace los medios de crecimiento en la placa de cultivo con medios que contengan doxiciclina e incube.
La doxiciclina, un análogo sintético de la tetraciclina, se une a la proteína TetR y cambia su conformación. Este cambio interrumpe la interacción de la proteína TetR con la secuencia TetO, inhibiendo la expresión del gen diana.
Sembrar las células a 1 x 106 células/cm2 en placas de Petri de 100 milímetros, en presencia de un medio esencial mínimo completo. Cultivar durante 24 horas a 37 grados centígrados en dióxido de carbono al 5% con humedad. Al día siguiente, agregue 500 microlitros de medio completo sin antibióticos a cada pocillo de una nueva placa de 12 pocillos y precaliente la placa a 37 grados centígrados durante 30 minutos.
Durante esta incubación, agregue 1 microgramo del plásmido de respuesta y 1 microgramo de vector regulador a un tubo de 1,5 mililitros por pocillo. Lave las células epiteliales alveolares con 10 mililitros por pocillo de 37 grados Celsius PBS sin calcio ni magnesio, y trate las células con 5 mililitros por pocillo de 37 grados Celsius 0,05% de tripsina durante dos a cuatro minutos en la incubadora de cultivos celulares.
Cuando las células se hayan desprendido, neutralice la tripsina con 10 mililitros por pocillo de medio completo sin antibiótico y recoja las células en un nuevo tubo de 50 mililitros. Lave el plato con 4 mililitros de medio fresco para recolectar las células restantes y sedimente las células por centrifugación.
Vuelva a suspender el gránulo en 1 mililitro de PBS para contarlo y centrifugar las células nuevamente. Vuelva a suspender el sedimento a una densidad de 4 x 107 células/ml de tampón de resonasión, y agregue 4 x 105 células a cada tubo de plásmido y vector con una mezcla suave. Coloque 1 tubo en el dispositivo de electroporación y llénelo con 3,5 mililitros de tampón electrolítico.
Presione completamente el pistón para insertar una punta de electrodo chapada en oro en una pipeta y mezcle suavemente el contenido del tubo. Aspire cuidadosamente las células con una pipeta e inserte la pipeta en la estación de electroporación hasta que se escuche un chasquido. Seleccione el protocolo de electroporación adecuado para las células epiteliales alveolares y pulse Inicio en la pantalla táctil.
Inmediatamente después de la transfección, retire la pipeta y transfiera las células a un pocillo de la placa de 12 pocillos precalentada. Cuando todas las células hayan sido electroporadas y plateadas, coloque la placa en la incubadora de cultivos celulares, reemplazando el sobrenadante en cada pocillo con medio completo con antibióticos después de dos días. El éxito de la transfección puede confirmarse mediante la expresión de EGFP, observada por microscopía de fluorescencia o citometría de flujo utilizando un vector de control.
Para inhibir la transcripción del gen de interés, 72 horas después de la transfección, reemplace el sobrenadante con 1 mililitro por pocillo de medio completo suplementado con 1 microgramo por mililitro de doxiciclina recién preparada. Para evaluar la vida media del ARNm del gen de interés, devuelva la placa a la incubadora de cultivos celulares de 15 minutos a 6 horas.
Lavar un pocillo con 1 mililitro de PBS helado, antes de lisar las células con 500 microlitros de tampón de lisis de un kit de extracción de ARN de fenol-cloroformo disponible comercialmente, y agitar suavemente en cada punto de tiempo experimental. Luego, aísle el ARN de acuerdo con las instrucciones del kit y determine el rendimiento y la pureza del ARN mediante espectrofotometría a 230, 260 y 280 nanómetros.