Knockout de múltiples genes mediado por concatemeros CRISPR: una técnica para eliminar simultáneamente múltiples genes mediante una vía de unión de extremos no homóloga en células intestinales de ratón

0 vistas4:13 min • July 8th, 2025

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Para eliminar simultáneamente múltiples genes utilizando el sistema CRISPR-concatemer-Cas9, comience con un tubo que contenga la suspensión de células intestinales del ratón. Complemente el tubo con vectores concatemeros CRISPR que contengan el casete de expresión para múltiples ARN guía, o ARNg, integrados adyacentes entre sí.

Cada casete de ARNg está diseñado a medida para eliminar individualmente el gen deseado. Agregue vectores de expresión que codifican la endonucleasa Cas9 al mismo tubo. Electroporar la mezcla de plásmidos celulares: una técnica que utiliza corriente eléctrica para facilitar la entrada de plásmidos en la célula. Dentro de la célula, la coexpresión del concatemer CRISPR y el vector Cas9 forma secuencias de ARNg y nucleasas Cas9, respectivamente.

Cada secuencia de ARNg se une a la enzima Cas9 correspondiente, formando múltiples complejos Cas9-ARNg que se unen a los sitios objetivo en el genoma del huésped. Esta unión activa la enzima Cas9, que produce una muesca en ambas hebras de ADN aguas arriba del sitio del motivo adyacente protoespaciador, o PAM. Esto da como resultado una ruptura de doble hebra, o DSB, en el ADN diana.

En ausencia de una secuencia homóloga al gen diana, se activa el mecanismo de reparación endógeno de la célula, llamado unión de extremos no homólogos, lo que permite que las proteínas de reparación y las moléculas de quinasa se unan en el sitio de ruptura. Más tarde, la enzima ligasa repara el DSB, lo que resulta en modificaciones de la secuencia del gen diana. Estas modificaciones interrumpen la función de los genes, lo que resulta en la eliminación de múltiples genes.

Comience este procedimiento agregando 9 mililitros de medio de suero reducido al tubo de 15 mililitros que contiene la suspensión celular y centrifugue a 400 G durante 3 minutos a temperatura ambiente. Retire todo el sobrenadante y vuelva a suspender el gránulo en una solución de electroporación. Agregue una cantidad total de 10 microgramos de ADN a dos tubos nuevos. Luego, agregue la solución de electroporación hasta un volumen final de 100 microlitros y mantenga la mezcla de ADN celular en hielo.

Transfiera la mezcla de ADN celular a la cubeta de electroporación. Coloque la cubeta en la cámara del electroporador. Mida la impedancia presionando el botón apropiado en el electroporador y asegúrese de que sea de 0.030 a 0.055 ohmios. Realice la electroporación de acuerdo con la configuración indicada en el protocolo de texto. Agregue 400 microlitros de tampón de electroporación más inhibidor de ROCK a la cubeta y luego transfiera todo su contenido a un tubo de 1,5 mililitros.

Incube a temperatura ambiente durante 30 minutos para permitir que las células se recuperen. Después de 30 minutos, centrifugar a 400G durante 3 minutos a temperatura ambiente. Retire el sobrenadante y vuelva a suspender el sedimento en 20 microlitros por pocillo de matriz basal. Siembre aproximadamente 1 x 104 a 1 x 105 células por pocillo en una placa de 48 pocillos y agregue EGF más inhibidor de Noggin GSK-3, inhibidor de ROCK y medio de dimetilsulfóxido al 1,25%. Incubar a 37 grados centígrados.

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Última actualización: 1 agosto 2026