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Los osteoclastos, macrófagos multinucleados, facilitan la reabsorción ósea: la descomposición del tejido óseo y la liberación de minerales óseos.
Para cuantificar la reabsorción de osteoclastos in vitro, cultivar células mononucleares de sangre periférica humana en el factor estimulante de colonias de macrófagos, M-CSF, que contiene medios para la diferenciación en células progenitoras de osteoclastos y su adhesión. Cosecha los progenitores de osteoclastos y centrifuga.
Pipetee la suspensión celular resuspendida en un medio, suplementado con M-CSF y activador del receptor del ligando del factor nuclear kappa-Β, RANKL, en pocillos de placas de pocillos múltiples recubiertos con fosfato de calcio, imitando el componente óseo inorgánico. M-CSF y RANKL causan diferenciación de progenitores de osteoclastos y fusión en osteoclastos, activando la reabsorción.
Los osteoclastos activados se adhieren al recubrimiento de fosfato de calcio, reorganizando su citoesqueleto para formar una zona de sellado rica en actina, y desarrollan bordes ondulados, que secretan protones e hidrolasas ácidas. El ambiente ácido resultante disuelve el recubrimiento de fosfato de calcio, liberando iones de calcio y fosfato y formando un pozo de reabsorción.
Después de la incubación, lave los pocillos, eliminando los iones disueltos. Fije y permeabilice los osteoclastos para su posterior tinción. Tiñe los filamentos de actina con un tinte adecuado. Contratiñe los núcleos con un tinte de unión al ADN. Tiñe el calcio en el revestimiento del pocillo con un tinte aglutinante de calcio.
Bajo un microscopio de fluorescencia, los osteoclastos funcionales exhiben múltiples núcleos fluorescentes y anillos de actina, cruciales para la función de reabsorción. Los hoyos de reabsorción aparecen como áreas negras en el recubrimiento fluorescente de fosfato de calcio superpuesto por los anillos de actina.
Utilizando un software adecuado, cuantificar el área de la fosa, determinando la reabsorción osteoclástica.
Vuelva a suspender los PBMC en un alfa-MEM completo que contenga 20 ng/ml de factor estimulante de colonias de macrófagos y siembre 2,5 x 10 5 células/cm2 PBMC en un matraz. Incubar las placas recubiertas de fosfato de calcio con 50 microlitros de suero bovino fetal a 37 grados centígrados durante una hora.
A continuación, lave el matraz dos veces con PBS para separar los precursores de osteoclastos de las células muertas o no adherentes. Luego, agregue 4 mililitros de tripsina por matraz de 75 cm2. Después de 30 minutos, detenga la digestión agregando 4 mililitros de alfa-MEM completo. Luego, separe con cuidado las células con un raspador de células.
Transfiera las células a un tubo de 50 mililitros y cuente el número total de células usando una cámara de recuento. Centrifugar el tubo a 350 x g durante siete minutos para granular las células, y volver a suspender el gránulo en alfa-MEM completo que contenga M-CSF y RANKL para obtener 1 x 106 células/ml.
Aspirar el suero bovino fetal de la placa recubierta de fosfato de calcio y pipetear 200 microlitros de suspensión celular por pocillo. Después de la incubación, lave las células dos veces con PBS. Fije las células con paraformaldehído al 4% durante 10 minutos y lávelas nuevamente con PBS.
Para la tinción, agregue tampón de permeabilización a las células fijas e incube durante cinco minutos.
Para teñir los filamentos de actina, incube las células con 100 microlitros de solución de faloidina marcada con AlexaFluor 546 en PBS durante 30 minutos. Luego, aspire la solución de tinción y tiña los núcleos con 100 microlitros de Hoechst durante 10 minutos.
Tiñe el recubrimiento de fosfato de calcio con 100 microlitros de calceína 10 micromolares en PBS durante 10 minutos. Después de lavarse tres veces con PBS, capture imágenes.