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Las septinas son proteínas citoesqueléticas que comprenden un dominio de unión a GTP flanqueado por dominios terminales amino y carboxilo, con una capacidad inherente para autoensamblarse en filamentos y estructuras de orden superior en la membrana plasmática interna para diversas funciones celulares.
Para estudiar las interacciones septina-membrana in vitro utilizando un imitador biológico de membrana, obtenga un tubo de microcentrífuga cortado. Aplique adhesivo ultravioleta sobre el borde plano sin cortar y colóquelo sobre un cubreobjetos de vidrio hidrofilizado tratado con plasma. Tras la exposición a la luz ultravioleta, el adhesivo se cura, creando una cámara de reacción abierta.
Transfiera vesículas lipídicas unilamelares zwitteriónicas monodispersas de la composición lipídica deseada, complementadas con tampón que contiene cationes mono y divalente, a la cámara. Los cationes facilitan que las vesículas lipídicas se adsorban y se acumulen en el cubreobjetos. Agite suavemente la cámara, iniciando la ruptura de la vesícula, e incube.
Las vesículas rotas se despliegan y se fusionan con el cubreobjetos a través de sus grupos de cabezas hidrofílicas, formando parches de bicapa lipídica plana. Los bordes de los parches provocan la ruptura de las vesículas restantes, generando una bicapa lipídica continua con soporte plano, SLB. Elimine el exceso de vesículas no adsorbidas con un tampón adecuado.
A continuación, agregue una suspensión de septina marcada con fluorescencia con tampón que contenga agente de apiñamiento e incube. Los agentes de aglomeración permiten que las septinas se depositen en el cubreobjetos recubierto de SLB. En condiciones óptimas, las septinas pueden asociarse con los lípidos en el SLB, ensamblándose en estructuras organizadas.
Ilumine selectivamente el cubreobjetos utilizando microscopía de fluorescencia de reflexión interna total para excitar las septinas marcadas con fluorescencia adheridas en el SLB para observar el ensamblaje de septinas.
Para comenzar la limpieza con plasma de los portaobjetos, purgue el limpiador de plasma durante 5 minutos con oxígeno para eliminar el aire de las líneas y la cámara. Coloque los portaobjetos de vidrio secos en una base de cerámica. Durante la purga, vierta un gas inerte sobre los portaobjetos de vidrio de microcubierta para eliminar el polvo y las partículas.
Coloque la base en la parte posterior de la cámara de plasma de modo que los cubreobjetos estén paralelos al borde largo de la cámara. Ejecute el limpiador de plasma durante 15 minutos con oxígeno a máxima potencia.
Para la preparación de la cámara, corte la tapa justo debajo de la parte esmerilada de un tubo de PCR de 0,2 mililitros. Pintar el borde del tubo de PCR con adhesivo activado por UV, evitando el interior del tubo. Coloque suavemente el tubo de PCR pegado en el centro de un cubreobjetos limpiado con plasma, luego coloque la cámara bajo luz ultravioleta de longitud de onda larga durante 5 a 7 minutos para curar el adhesivo.
Para formar una bicapa, agregue los reactivos al pozo. Agite suavemente las cámaras de lado a lado para interrumpir los SUV y luego incube a 37 grados centígrados durante 20 minutos.
Después de la incubación, enjuague la bicapa 6 veces con 150 microlitros de SLBB, pipeteando para eliminar el exceso de lípidos. Luego, lave la bicapa 6 veces con 150 microlitros de tampón de reacción, antes de incubar con las septinas.
En el último paso de lavado, retire el tampón de reacción, dejando 75 microlitros en el pozo. Agregue 25 microlitros de septinas diluidas en SSB e imagen por microscopía TIRF.