Ensayo de separación de fases de proteínas: un método optogenético para la separación de fases de proteínas de unión a ARN mutante en neuronas motoras espinales de larvas de pez cebra

0 vistas4:38 min • July 8th, 2025

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Las proteínas de unión al ARN nuclear, RBP, son proteínas multifuncionales compuestas por regiones ordenadas con una estructura tridimensional bien definida y regiones menos estables e intrínsecamente desordenadas, IDR.

En varias enfermedades neurodegenerativas, las mutaciones específicas de IDR hacen que las RBP se localicen erróneamente en el citoplasma y participen de manera aberrante en interacciones débiles, formando inclusiones dinámicas sin membrana, un fenómeno llamado separación de fases. Eventualmente, estas inclusiones maduran en agregados tóxicos e insolubles, lo que resulta en disfunción y degeneración neuronal.

Para investigar la separación de fases de RBP in vivo utilizando optogenética, comience con una larva de pez cebra transgénica anestesiada y descorionada, que expresa un RBP mutado en IDR fusionado con un reportero fluorescente y un dominio fotorreceptor sensible a la luz azul, en un tampón adecuado.

A continuación, monte la larva lateralmente en una gota de agarosa fundida para obtener imágenes de la médula espinal. Deje que la agarosa se solidifique, inmovilizando la larva. Usando un microscopio confocal, adquiera imágenes de la médula espinal para visualizar las RBP fluorescentes, localizadas dentro de los núcleos neuronales.

Ahora, retire la larva de la agarosa y transfiérala a una placa de pocillos múltiples que contenga tampón. Coloque la placa en un panel de diodos emisores de luz azul optimizado e ilumine la larva.

Tras la exposición a la luz azul, las RBP mutantes se localizan erróneamente en el citoplasma, donde los dominios fotorreceptores se oligomerizan y forman grupos, acercando las IDR de las RBP y facilitando su autoasociación en inclusiones sin membrana.

Después de la iluminación, incruste la larva en agarosa y obtenga imágenes de su médula espinal. Las RBP fluorescentes aparecen como compartimentos discretos dispersos dentro del citoplasma neuronal.

Para obtener imágenes de las larvas de pez cebra que expresan TDP-43 optogenético, descorionar los peces doblemente transgénicos y anestesiarlos en tampón E3 que contiene 250 microgramos por microlitro de Tricane.

A continuación, precaliente agarosa al 1% a baja temperatura de fusión que contenga 250 microgramos por microlitro de metanosulfonato de etilo 3-aminobenzoato a 42 grados Celsius, luego, coloque una gota de agarosa en el plato base de vidrio. El diámetro de la gota de agarosa en forma de cúpula en el plato de vidrio debe ser de 8 a 10 milímetros.

A continuación, con una pipeta Pasteur, agregue el pescado anestesiado a la agarosa en el plato base de vidrio. Minimice la cantidad de tampón E3 agregado a la agarosa junto con el pescado. Luego, mezcle pipeteando varias veces.

Durante la solidificación de la agarosa, mantenga al pez de lado con una aguja de jeringa, de modo que la médula espinal esté en una posición horizontal adecuada. Después de que la agarosa se haya solidificado, agregue un par de gotas de tampón E3 en el pez montado en agarosa en forma de cúpula.

Usando un microscopio confocal equipado con una lente de objetivo de inmersión en agua de 20x, adquiera secciones en Z confocales en serie de la médula espinal. Incluya la cloaca en el lado ventral del pez en las regiones de interés como referencia para identificar y comparar los segmentos espinales a través de los puntos de tiempo.

Tan pronto como se completen las imágenes, use una aguja de jeringa para romper con cuidado la agarosa y retirar el pescado de la agarosa. Mantenga la cantidad de tiempo que el pescado está incrustado en la agarosa lo más corto posible, aunque la inclusión de agarosa durante menos de 30 minutos no afecta la viabilidad del pescado.

Agregue 7,5 mililitros de tampón E3 a un pocillo de un plato de 6 pocillos y coloque el pez doble transgénico en ese pocillo. Luego, coloque el plato en el panel LED, manteniendo el plato y el panel LED a 5 milímetros de distancia con un espaciador, y encienda la luz LED azul.

Mantenga algunos peces doblemente transgénicos en un plato separado de 6 pocillos cubierto con papel de aluminio para peces de control sin iluminación. Después del tiempo de iluminación deseado, obtenga imágenes de la médula espinal del pez iluminado como se demostró anteriormente.

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Última actualización: 15 agosto 2026