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Los enterocitos son células especializadas del intestino delgado que desempeñan un papel crucial en la absorción de nutrientes, incluida la absorción de hierro.
Para evaluar la biodisponibilidad del hierro, la proporción de hierro ingerido accesible para funciones fisiológicas, tome una solución acidificada que contenga la muestra de alimento. Ahora, agregue pepsina, una enzima de digestión de proteínas, del estómago. A pH ácido, la pepsina inicia la digestión gástrica al descomponer proteínas dietéticas complejas en pequeños péptidos.
Agregue bicarbonato de sodio para aumentar el pH y detener la digestión gástrica. Agregue una solución que contenga enzimas pancreáticas y bilis para simular la digestión intestinal. Transfiera la mezcla a la parte superior de un sistema de cultivo celular de dos cámaras.
La cámara inferior contiene enterocitos diferenciados de Caco-2, una línea celular de adenocarcinoma de colon. Una membrana de diálisis separa la cámara superior de la inferior. La membrana permite la difusión de especies de bajo peso molecular.
La mezcla de enzimas pancreáticas y bilis en la cámara superior descompone los carbohidratos, las proteínas y los lípidos en subunidades más pequeñas, liberando hierro en forma de iones férricos.
Los potenciadores de la biodisponibilidad en los alimentos convierten los iones férricos liberados al estado ferroso, aumentando su solubilidad. Estos iones atraviesan la membrana para llegar a la cámara inferior.
Los transportadores de iones metálicos en la membrana celular de los enterocitos ayudan en la absorción de iones ferrosos. Una vez dentro, el hierro se une a la apoferritina, una proteína de almacenamiento de hierro que da como resultado un complejo, la ferritina. Recolectar las células para cuantificar la ferritina y evaluar la biodisponibilidad del hierro.
Pese la muestra en un tubo centrífugo estéril de 50 mililitros. Ajuste el pH con ácido clorhídrico y agregue 10 mililitros de solución salina fisiológica que contenga cloruro de sodio 140 milimolar y cloruro de potasio 5 milimolar. Luego, configure el proceso de digestión gástrica agregando 0,5 mililitros de la solución de pepsina porcina preparada a la muestra.
A continuación, incube en un agitador oscilante a temperatura suave, durante 1 hora a 37 grados centígrados, e inicie el proceso de digestión intestinal de cada muestra ajustando el pH a 5,5-6,0 con bicarbonato de sodio molar 1,0.
Agregue 2,5 mililitros de la solución de bilis pancreática a cada tubo de muestra y ajuste el pH a 6,9-7,0 con 1,0 molar de bicarbonato de sodio.
Usando la solución que contiene cloruro de sodio 140 milimolar y cloruro de potasio 5 milimolar, agregue líquido para que cada tubo contenga exactamente 15 gramos de material total.
Ahora, transfiera 1,5 mililitros de cada digestión intestinal a la cámara superior del pocillo que contiene las células Caco-2 de la placa de cultivo de 6 pocillos. Vuelva a colocar la tapa de la placa e incube a 37 grados centígrados en dióxido de carbono al 5% en un agitador oscilante a 6 oscilaciones por minuto, durante 2 horas.
Retire el anillo de inserción con el digestor. Luego, agregue 1 mililitro de medio esencial mínimo a pH 7 a cada pocillo y mantenga la placa nuevamente en la incubadora durante 22 horas.
Ahora, retire el medio de cultivo celular y agregue 2 mililitros de agua de 18 mega ohmios (MΩ) a la monocapa celular. Transfiéralo a un sonicador y recoja todo el lisado celular en tubos de microcentrífuga para análisis de proteínas celulares y ferritina celular.