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Cuando se exponen a un alérgeno (antígeno no patógeno), las células presentadoras de antígenos procesan y presentan el alérgeno a los linfocitos T auxiliares tipo 2. Estos linfocitos T hacen que los linfocitos B se diferencien en células plasmáticas y produzcan anticuerpos de inmunoglobulina E, IgE, que se unen a los receptores Fc específicos de IgE de alta afinidad en la superficie de los basófilos circulantes, células secretoras que contienen gránulos.
Tras la exposición posterior al alérgeno, los complejos IgE-Fc reconocen y se reticulan con el alérgeno, activando los basófilos para liberar gránulos que comprenden mediadores como citoquinas y enzimas lisosomales, incluida la β-hexosaminidasa, evocando una potente respuesta inflamatoria.
Para detectar el potencial alérgico de un antígeno de prueba in vitro, comience con una suspensión de basófilos cancerosos de rata transducidos que expresan receptores de Fc específicos de IgE humana. Tratar con suero humano que contenga IgE de un donante alérgico. Los anticuerpos IgE se unen y sensibilizan a los receptores Fc basófilos.
A continuación, agregue tampón y un volumen adecuado de antígeno de prueba a los basófilos sensibilizados. El antígeno, dependiendo de su afinidad por la IgE unida a los receptores Fc, se entrecruza con los anticuerpos e inicia la desgranulación basófila, liberando mediadores que incluyen β-hexosaminidasa en la solución.
Recoger la solución en una placa multipocillo fresca que contenga un sustrato fluorogénico de β-hexosaminidasa e incubar. La β-hexosaminidasa hidroliza el sustrato, generando un producto fluorescente. Después de la incubación, agregue un tampón de pH alto para inhibir la actividad de la β-hexosaminidasa y detener la reacción.
Con un lector de microplacas, mida la fluorescencia del producto formado, indicativa de la actividad de la β-hexosaminidasa liberada y, a su vez, el potencial alérgico del antígeno para inducir la desgranulación de basófilos.
Centrifugar la suspensión de Ag8/suero preincubada y transferir 50 microlitros de la suspensión de Ag8/suero centrifugada a cada pocillo que contenga células RBL humanizadas sin alterar el sedimento de la célula Ag8.
Utilice células sensibilizadas, no estimuladas, sin antígeno, como control sin antígeno para la indicación de la meseta de señal inferior o de fondo, y no sensibilice los pocillos de control de lisis de fondo y máximo. Cubra el plato con la tapa e incube durante la noche a 37 grados centígrados y 5% a 7% de dióxido de carbono.
Aspirar el medio celular que contiene sueros. Invierta y golpee la placa sobre el papel absorbente para vaciar la placa para lavar las células RBL humanizadas. Lave las células tres veces agregando 200 microlitros de tampón de Tyrode por pocillo e incube durante aproximadamente 30 segundos por lavado, durante los dos primeros lavados. Después de agregar el tampón de Tyrode por tercera vez, aspire el tampón y deje la solución en los pocillos, hasta que esté listo para agregar la dilución del antígeno.
Transfiera 100 microlitros de solución de antígeno a cada pocillo que contenga las células RBL humanizadas y presensibilizadas, pero no estimule la lisis máxima y las células de fondo no sensibilizadas con antígeno.
Agregue 100 microlitros de tampón de Tyrode en los pocillos de control de lisis máxima, pocillos de control de fondo no sensibilizados y pocillos sensibilizados sin antígenos. Incube las células durante una hora a 37 grados centígrados y 5% a 7% de dióxido de carbono.
Trate los pocillos de control de lisis máxima con 10 microlitros de Triton X-100 al 10% por pocillo y mezcle adecuadamente para lisar las células por completo para una liberación del 100% de beta-hexosaminidasa. Agregue 50 microlitros de solución de sustrato en una nueva placa de 96 pocillos no vinculante.
Transfiera 50 microlitros de sobrenadante de los pocillos de la placa humanizada que contiene células RBL a la nueva placa que contiene la solución de sustrato e incube la placa durante una hora a 37 grados Celsius para permitir la conversión del sustrato fluorogénico.
Agregue 100 microlitros de solución de parada por pocillo y mida la fluorescencia como se describe en el manuscrito del texto.