Ensayo de viabilidad de luciferasa basado en ATP: un método homogéneo para evaluar el potencial inhibidor del crecimiento de los agentes de prueba en organoides tumorales

0 vistas3:24 min • July 8th, 2025

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El trifosfato de adenosina, ATP, la principal fuente de energía celular, es vital para diversas funciones celulares. Bajo estrés, los niveles intracelulares de ATP se ven afectados negativamente, lo que convierte al ATP en un buen marcador de células viables y metabólicamente activas.

Para comenzar, siembre la suspensión de células tumorales en una microplaca de fondo transparente con paredes negras para una dispersión mínima de la luz durante la medición de la intensidad de la luz. La microplaca consiste en un recubrimiento de hidrogel que evita que las células se adhieran a la placa, lo que permite la interacción de célula a célula y el autoensamblaje en organoides tumorales, cultivos de tejidos tridimensionales que imitan el microambiente tumoral.

A continuación, trátelo con un compuesto de prueba. El compuesto de prueba interactúa con las células organoides y, dependiendo de su potencial inhibidor del crecimiento, puede interrumpir los procesos metabólicos productores de energía, lo que resulta en el agotamiento intracelular de ATP.

Después del tratamiento, agregue un reactivo de un solo paso que comprenda detergentes, inhibidores de ATPasa, la enzima luciferasa, sustrato específico de luciferasa, luciferina e iones de magnesio. Incubar durante el tiempo deseado.

El detergente solubiliza las membranas celulares, provocando la lisis celular y la extracción de ATP en solución, mientras que los inhibidores de la ATPasa inactivan las ATPasas endógenas liberadas, estabilizando el ATP.

Después de su extracción, el ATP, en presencia de iones de magnesio, facilita que la luciferina se una a la luciferasa, que oxida la luciferina en oxiluciferina de alta energía que, al relajarse, genera un fotón bioluminiscente.

Con un luminómetro, mida la intensidad de la luz producida por los fotones, representativa de la concentración intracelular de ATP. Las cantidades más bajas de ATP indican una menor viabilidad celular, lo que sugiere un mayor potencial inhibidor del crecimiento del compuesto de prueba.

Después de 24 horas de cambio de medio, pique los organoides tumorales con un instrumento de fragmentación y dispersión celular, equipado con un portafiltros que contiene un filtro de malla de 70 micrómetros. Diluir 15 milímetros de suspensión de organoides tumorales 10 veces.

Utilice el dispensador de suspensión celular para sembrar 40 microlitros de suspensión de organoides tumorales diluidos en una microplaca esferoide de fijación ultrabaja de 384 pocillos.

Después de 24 horas, use un manipulador de líquidos para agregar 0.04 microlitros de soluciones de agente de prueba de 10 diluciones en serie en rangos de concentración final de 20 micromolares a 1.0 nanomolares en los pocillos, e incube la placa durante 6 días.

Al final de la incubación, agregue un reactivo intracelular que mida ATP en los pocillos de prueba. Use una batidora para mezclar el contenido del plato e incube el plato durante 10 minutos a aproximadamente 25 grados centígrados. Utilice un lector de placas para medir el contenido de ATP intracelular como luminiscencia.

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Última actualización: 15 agosto 2026