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Los organoides intestinales recapitulan la organización cripta-vellosidades similar al intestino que tiene una luz central que comprende células muertas y desechos. La luz está revestida por células parecidas a vellosidades y protuberancias en ciernes en forma de cripta que albergan células madre.
Las diferentes células organoides producen niveles variables de especies reactivas de oxígeno, ROS, subproductos de actividades metabólicas, cuya acumulación conduce al estrés oxidativo.
Para visualizar el estrés oxidativo en células variadas, comience tomando una placa de pocillos múltiples que contenga organoides 3D cultivados en una matriz basal. Las células madre organoides expresan una proteína de fluorescencia verde o una proteína marcada con GFP que ayuda a distinguirlas durante las imágenes.
Complemente los pozos con terc-butil hidroperóxido, un inductor de ROS, e incube. El inductor activa la NADPH oxidasa unida a la membrana y estimula la producción de ROS dentro de las células. Las células madre, al ser metabólicamente activas, producen más ROS que las células diferenciadas.
Agregue sondas fluorogénicas sensibles a ROS. Estas sondas lipofílicas ingresan rápidamente a las células y reaccionan con ROS para producir fluorescencia roja. Trate los organoides con el tinte Hoechst que tiñe selectivamente los núcleos de células vivas. Toma imágenes de los organoides con un microscopio confocal.
Las células organoides en la periferia con núcleos teñidos muestran diversos grados de fluorescencia roja, que es alta en las células madre que expresan GFP y baja en las células diferenciadas. Las células muertas con niveles inherentemente altos de ROS exhiben fluorescencia roja en el lumen.
La intensidad de la fluorescencia roja se correlaciona con niveles variables de estrés oxidativo en diferentes tipos de células.
Para visualizar el estrés oxidativo mediante microscopía confocal, agregue 1 microlitro de solución madre de N-acetilcisteína en los pocillos correspondientes de la cámara de ocho pocillos del microportaobjetos sembrada con organoides.
Después de una incubación de 1 hora, agregue 1 microlitro de solución madre de hidroperóxido de terc-butilo en los pocillos correspondientes e incube durante otros 30 minutos. A continuación, agregue 1 microlitro de la dilución 1.25 milimolar de la sonda fluorogénica por pocillo, seguido de 1 microlitro de 1.25 miligramos por mililitro de solución de Hoechst.
Después de otra incubación de 30 minutos, retire el medio sin alterar el BMM y agregue suavemente 250 microlitros de DMEM tibio sin rojo de fenol.
Tome imágenes de los organoides utilizando un microscopio confocal, equipado con una cámara térmica y suministro de gas que detecta la sonda fluorogénica.
Usando el control positivo, configure la intensidad del láser y el tiempo de exposición para la señal ROS, y verifique que esta señal sea más baja en el control negativo. A continuación, con un ocular, examine el portaobjetos para identificar los organoides que expresan GFP y ajuste la intensidad del láser.
Configure una pila z de 25 micrómetros y defina posiciones para obtener una imagen unida de todo el organoide para obtener una sección de los organoides que muestre una capa de células.