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Los virus adenoasociados recombinantes, rAAV, virus de ADN monocatenario modificados genéticamente modificados y sin envoltura, son portadores de genes terapéuticos prometedores.
Los rAAV se adhieren a los receptores de la membrana celular diana y se someten a endocitosis mediada por clatrina, lo que facilita la administración nuclear del genoma de rAAV y la expresión génica terapéutica. Sin embargo, los anticuerpos neutralizantes del sistema inmunitario dirigidos contra los rAAV se unen al epítopo específico de rAAV, interfiriendo con la unión a la membrana celular, la entrada celular y la transferencia de genes.
Para detectar anticuerpos neutralizantes contra rAAV específicos en suero de oveja, primero, obtenga concentraciones adecuadas de suero diluido. Agregue AAV recombinantes que expresen el gen de la fosfatasa alcalina placentaria humana, hPLAP. Permita que los anticuerpos neutralizantes se unan y neutralicen los AAV.
Transfiera esta mezcla a los pocillos de una placa de pocillos múltiples que contenga un cultivo de células epiteliales humanas adheridas. Tras la incubación, los AAV sufren endocitosis celular. Las células transducidas expresan hPLAP, unido a la membrana celular. Sin embargo, los AAV neutralizados no pueden ingresar a las celdas.
Deseche el medio de los pocillos. Use paraformaldehído para fijar las células. Agregue tampón precalentado y caliente las células para inactivar la fosfatasa alcalina celular endógena; hPLAP es resistente a la inactivación por calor.
Agregue los sustratos hPLAP: fosfato de bromocloroindolilo, BCIP y nitro azul tetrazolio, NBT. hPLAP desfosforila BCIP, que se somete a dimerización, formando un intermedio azul. Los iones de hidrógeno liberados reducen NBT, produciendo un precipitado púrpura insoluble. Imagen para observar depósitos morados rodeando las células transducidas.
Una menor proporción de área púrpura sugiere una mayor concentración de anticuerpos neutralizantes de AAV.
Comience a sembrar las células HT1080 el primer día diluyendo las células a una concentración de 1 x 105 células/ml en medios DMEM completos precalentados.
Luego, siembre 100 microlitros de células, por pocillo, en placas transparentes de fondo plano de 96 pocillos a la concentración de 1 x 104 células por pocillo. Incube la placa a 37 grados centígrados con un 5% de dióxido de carbono durante la noche durante 16 a 22 horas.
El segundo día, genere diluciones en serie de las muestras de suero de interés en tubos de microcentrífuga de 1,5 mililitros utilizando DMEM completo precalentado.
A cada tubo con muestras de suero diluido, agregue 66 microlitros de la solución de trabajo del virus del genoma viral 7.5 x 106 por microlitro. Mezcle las diluciones de virus / suero mediante pipeteo y luego coloque los tubos que contienen las mezclas de virus / suero en una incubadora a 37 grados Celsius con 5% de dióxido de carbono durante 30 minutos, para permitir que ocurra una posible neutralización.
Después de 30 minutos, pipetee 100 microlitros de la mezcla de virus / suero en cada pocillo en la placa de 96 pocillos que contiene 1 x 104 células por pocillo, luego, envuelva la placa en un papel de aluminio para colocarla en una incubadora a 37 grados Celsius con 5% de dióxido de carbono durante la noche durante 16 a 24 horas.
El tercer día, aspire el medio de los pocillos de la placa de 96 pocillos utilizando una campana extractora al vacío sin interrumpir las células adheridas y agregue 50 microlitros de paraformaldehído al 4% a cada pocillo. Después de envolver el plato en papel de aluminio, déjelo durante 10 minutos a temperatura ambiente.
Posteriormente, lavar y aspirar las células dos veces con 200 microlitros de PBS a temperatura ambiente. Después del segundo lavado, pipetee 200 microlitros de PBS precalentado en cada pocillo y envuelva la placa en papel de aluminio seguido de incubación a 65 grados Celsius durante 90 minutos para desnaturalizar la actividad de la fosfatasa alcalina endógena.
Después de la incubación, agregue 50 microlitros del BCIP/NBT recién preparado y disuelto en cada pocillo e incube las placas envueltas a temperatura ambiente durante 2 a 24 horas. Más tarde, tome fotos de cada pocillo con una lente de objetivo de 4x en una cámara de microscopio óptico, asegurando el uso constante de la misma exposición, equilibrio de blancos y configuración de luz para todos los ensayos.