Ensayo de eferocitosis de células fijas: un método para estudiar la absorción eferocítica de células apoptóticas por macrófagos mediante microscopía de fluorescencia

0 vistas4:57 min • July 8th, 2025

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Las células que experimentan apoptosis (muerte celular programada) muestran señales de "comerme" en su superficie celular, lo que facilita la degradación por parte de los fagocitos, células inmunes especializadas. Este proceso de eliminación de células apoptóticas se llama eferocitosis.

Para realizar el ensayo de eferocitosis, primero, tome una suspensión de células apoptóticas de doble tinción. Las superficies de estas células se marcan con biotina y el citoplasma se etiqueta con un tinte de seguimiento celular, marcando materiales derivados de células apoptóticas.

Agregue la suspensión celular en un cultivo de células de macrófagos adheridas, que funcionan como eferocitos. Centrifugar, forzando el contacto entre macrófagos y células apoptóticas, e incubar.

Los receptores eferocíticos de los macrófagos se unen a la fosfatidilserina, una señal de devome, en la membrana celular apoptótica, lo que facilita su engullimiento. Pequeños fragmentos de la célula apoptótica se recogen dentro de una vesícula unida a la membrana, llamada eferosoma.

Esto da como resultado una fracción eferocitosa, parte de la célula apoptótica dentro del macrófago, y una fracción no eferótica, la parte no internalizada de la célula apoptótica.

Agregue estreptavidina marcada con fluorescencia, que se une a las moléculas de biotina expuestas en la superficie de la fracción no eferocitosa, diferenciando las porciones internalizadas y no internalizadas de la célula apoptótica.

Bajo un microscopio de fluorescencia, la fracción celular apoptótica no internalizada muestra el marcado de estreptavidina, mientras que los eferosomas aparecen como puntos discretos libres de estreptavidina.

Cuantificar la eferocitosis, determinar el número de eferosomas discretos y medir la intensidad de las fracciones de células apoptóticas eferóticas eferocitos y no eferocitos.

Después de preparar macrófagos humanos y células apoptóticas de Jurkat, use un hemocitómetro para contar las células apoptóticas. Luego, transfiera una cantidad suficiente de células apoptóticas a un tubo de microcentrífuga de 1,5 mililitros.

Granular las células Jurkat mediante centrifugación a 500 veces g durante 5 minutos. Luego, vuelva a suspender las células en 500 microlitros de PBS. Mientras las células de Jurkat están en la centrífuga, alícuota 10 microlitros de DMSO en un nuevo tubo de microcentrífuga.

A continuación, disuelva una cantidad mínima de NHS-biotina en el DMSO. Después de esto, transfiera 500 microlitros de la suspensión de células apoptóticas y PBS al tubo que contiene DMSO y NHS-biotina. Luego, diluya un tinte de seguimiento celular apropiado de acuerdo con las instrucciones del fabricante.

Incube la suspensión celular a temperatura ambiente durante 20 minutos en la oscuridad. Luego, agregue un volumen igual de RPMI 1640 con 10% de FBS e incube la suspensión a temperatura ambiente en la oscuridad durante 5 minutos más.

Después de esto, granular las células mediante centrifugación a 500 veces g durante 5 minutos. Luego, deseche el sobrenadante y vuelva a suspender las células teñidas en 100 microlitros de RPMI 1640 con FBS al 10%. Agregue 100 microlitros de suspensión de células teñidas gota a gota a cada pocillo de macrófagos. Luego, centrifugar la placa a 200 veces g durante 1 minuto. Incube la placa a 37 grados Celsius con 5% de CO2 en una incubadora de cultivo de tejidos.

Después del período de incubación adecuado, retire las células de la incubadora. Luego, lave las células dos veces con 1 mililitro de PBS. Después de esto, agregue estreptavidina conjugada con FITC diluida a cada pocillo e incube la placa durante 20 minutos en la oscuridad.

Lave las células tres veces con 1 mililitro de PBS y agite suavemente las muestras durante 5 minutos después de cada enjuague. Luego, fije las células con paraformaldehído al 4% en PBS durante 20 minutos a temperatura ambiente. Enjuague las células una vez con PBS para eliminar cualquier exceso de PFA.

Monte cubreobjetos en un portaobjetos de imágenes y transfiera el portaobjetos a un microscopio de fluorescencia. Capture pilas z de un número suficiente de celdas para la cuantificación.

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Última actualización: 15 agosto 2026