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Los neurotransmisores químicos liberados por una neurona afectan a las células vecinas, permitiendo que los impulsos eléctricos pasen entre las neuronas. El exceso de neurotransmisores excitadores causa alteraciones en la actividad eléctrica del cerebro, lo que lleva a convulsiones recurrentes: excitación neuronal repetitiva anormal y muerte neuronal gradual, lo que conduce a la epilepsia.
Para registrar la actividad epileptiforme ex vivo, comience tomando un inserto de membrana que contenga cortes organotípicos de corteza rinal-hipocampo derivados del cerebro de cachorro de rata, que representan eventos epilépticos en evolución. Cada corte tiene una circunvolución dentada definida - región DG y cornu amonis - región CA, que consta de neuronas piramidales multipolares muy compactas.
Cultive las rodajas durante un período prolongado, simulando condiciones de estrés inducidas por la privación sérica gradual que conducen a la muerte neuronal, asemejándose a las condiciones epilépticas in vivo. Coloque un corte organotípico en la cámara de registro de una configuración de electrofisiología (EEG), con el hipocampo tocando el fondo de la cámara.
La cámara de registro está precargada con un medio que contiene L-glutamina, un precursor de neurotransmisores, que inicia la excitación neuronal. Coloque el electrodo receptor conectado a un capilar de vidrio que contiene líquido cefalorraquídeo artificial en una región CA3 rica en neuronas piramidales.
Registre la actividad eléctrica. Genere un electrógrafo, que muestra brevemente los eventos ictales (áreas con picos repentinos) correspondientes al comienzo de la actividad epileptiforme.
Un mayor número de eventos ictales, que duran períodos prolongados, indica convulsiones recurrentes.
Prepare la configuración de electrofisiología en un circuito cerrado. Verifique que el caudal de la cámara de tipo interfaz esté configurado en dos mililitros por minuto y abra la válvula carbox. Verifique el nivel de agua en el sistema y coloque un trozo de papel de filtro en la cámara de registro de la interfaz para drenar cualquier exceso de medio.
Coloque un trozo de papel de limpieza de lentes debajo del marco para suministrar medio a la rebanada y encienda el controlador de temperatura, los amplificadores y los micromanipuladores.
Use una jeringa para cargar el electrodo de vidrio con líquido cefalorraquídeo artificial recién preparado. Coloque el electrodo de vidrio en el electrodo receptor y espere a que la temperatura en la cámara de interfaz se estabilice a 37 grados Celsius.
Trabajando en un gabinete de bioseguridad, coloque el inserto en una placa de 60 milímetros con una gota de medio. Use una cuchilla afilada para cortar una rebanada del inserto y colóquela en la cámara de interfaz con el hipocampo en la parte inferior derecha. Luego, coloque el electrodo receptor en la capa de celda piramidal CA3.
Inicie el protocolo de adquisición continua y grabe el segmento durante 30 minutos.