PCR de fusión de alta resolución para determinar variaciones de secuencia en secuencias de ADN mutante

0 vistas4:09 min • July 8th, 2025

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La reacción en cadena de la polimerasa de fusión de alta resolución, HRM-PCR, detecta variaciones de secuencia de ADN bicatenario y dsDNA con alta precisión.

Comience con una mezcla maestra que contenga polimerasa Taq inactiva, trifosfatos de desoxirribonucleótidos (dNTP) y el colorante reportero fluorescente. Agregue los cebadores hacia adelante y hacia atrás. Pipetee la mezcla a los pocillos de una placa de PCR.

Agregue la plantilla dsDNA. Selle la placa, evitando la evaporación de la mezcla. Comience la PCR.

La alta temperatura de desnaturalización desnaturaliza el dsDNA a ADN monocatenario, ssDNA, y activa la polimerasa. Luego, la reacción se enfría a la temperatura de recocido, lo que facilita la unión directa e inversa del cebador a los ssDNA a través del emparejamiento de bases complementarias específicas del sitio.

La polimerasa activada se recluta, extendiendo el dúplex de cebador de ADN mediante la adición de dNTP.

El colorante reportero fluorescente, un tinte específico de dsDNA presente en concentraciones saturadas, se intercala dentro de todo el dúplex, fluorescente brillante. El dúplex se somete a múltiples ciclos de PCR, produciendo varios fragmentos que contienen variantes.

Después de la PCR, realice un análisis de la curva de fusión volviendo a aumentar la temperatura de reacción de manera constante a lo largo del tiempo.

Dependiendo de la secuencia de nucleótidos, el sitio que contiene la variante puede desnaturalizarse primero, liberando el colorante. Como los sitios de unión de colorante restantes están saturados, el tinte no se vuelve a intercalar, lo que reduce la intensidad de la fluorescencia. Además, el dsDNA se disocia en ssDNA tras el calentamiento incremental.

Identifique la temperatura de fusión, a la que la mitad del dsDNA se desnaturaliza a ssDNA con una fuerte disminución de la fluorescencia. Un cambio en la curva de fusión de los fragmentos de ADN amplificados identifica las variaciones de la secuencia de nucleótidos de la muestra.

Para realizar el protocolo HRM-PCR, primero, diluya las muestras de ADN en tubos de 1,5 mililitros con agua hasta una concentración de 10 nanogramos por microlitro. A continuación, diluya las soluciones de imprimación descongeladas en tubos de 1,5 mililitros con agua hasta la misma concentración de 6 micromolares. Descongele las soluciones del kit HRM-PCR y mezcle cuidadosamente mediante vórtice para garantizar la recuperación de todo el contenido.

Centrifugar brevemente los tres viales que contienen una mezcla enzimática con colorante de unión al ADN, cloruro de magnesio y agua en una microcentrífuga antes de abrirlos. En un tubo de 1,5 mililitros a temperatura ambiente, use los componentes para preparar la mezcla de PCR para una reacción de 120 microlitros, como se describe en el protocolo de texto. Mezclar cuidadosamente por vórtice.

Es fundamental que trabajes con atención, navegación, de acuerdo con las buenas prácticas en biología molecular.

Pipetear 19 microlitros de la mezcla de PCR en cada pocillo de una placa blanca de pocillos múltiples. Agregue 1 microlitro de la plantilla de ADN ajustada a la concentración, luego, selle la placa blanca de múltiples pocillos con papel de aluminio. Centrifugar la placa multipocillo blanca durante 1 minuto a 1500 veces g en una centrífuga estándar de cubo oscilante que contenga un rotor para placas multipocillos con adaptadores adecuados. Cargue la placa multipocillo blanca en el instrumento HRM-PCR. Inicie el programa HRM-PCR con las condiciones de PCR que se encuentran en el protocolo de texto.

Después de la reacción HRM-PCR, realice un análisis HRM para determinar el polimorfismo de longitud CR1, como se describe en el protocolo de texto.

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Última actualización: 1 agosto 2026