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Técnicas biológicas
0 vistas • 5:16 min • July 8th, 2025
Para detectar interacciones antígeno-anticuerpo mediante fotometría de masas, primero se incuba la concentración deseada de antígenos y anticuerpos purificados durante el período de tiempo requerido, facilitando la unión antígeno-anticuerpo. Según la estequiometría de la unión al antígeno, las regiones de paratopo de estos anticuerpos pueden tener un número variable de antígenos adheridos.
Flujo en la solución que contiene los anticuerpos libres junto con los complejos antígeno-anticuerpo a través de una cámara de flujo preensamblada. Asegure la cámara en la platina del microscopio de un fotómetro de masas. Luego, dirija el rayo láser a través de la cámara de flujo para obtener imágenes óptimas.
Dependiendo del número de antígenos unidos a cada anticuerpo, la masa molecular de los complejos cambia. Estas variaciones de masa hacen que los complejos dispersen la luz de manera diferente.
Los complejos con masas moleculares más altas, donde dos antígenos se unen a ambos paratopos de un solo anticuerpo, dispersan más luz en comparación con los complejos que contienen un solo antígeno. Además, los anticuerpos libres muestran la menor cantidad de dispersión de luz.
Un detector recoge la luz dispersa y mide su frecuencia e intensidad. El fotómetro registra las fluctuaciones en la luz dispersa como un patrón de interferencia, representándolo como puntos.
Las manchas débiles corresponden a anticuerpos libres. Por el contrario, las manchas muy oscuras representan complejos con dos antígenos, y la mancha menos oscura contiene un antígeno unido.
La presencia de manchas oscuras se ajusta a las interacciones antígeno-anticuerpo.
Para evaluar la afinidad anticuerpo-antígeno mediante fotometría de masas, aplique una gota de aceite de inmersión de microscopio al objetivo del instrumento y coloque la cámara de flujo en la platina del microscopio. Agregue 10 microlitros de PBS filtrado a un extremo del canal de la cámara de flujo. El tampón entrará en el canal por acción capilar.
En la pestaña Control de enfoque del software de recopilación de datos, utilice los botones Arriba y Abajo de movimiento grueso de la platina para realizar los ajustes iniciales y haga clic en Nitidez para ver la lectura de la señal de nitidez. Utilice los botones de ajuste Arriba y Abajo para maximizar el valor de Nitidez y haga clic en Establecer enfoque y Bloquear enfoque para activar la función de seguimiento de enfoque. Una imagen de una diapositiva limpia debe tener un valor de "señal" igual o inferior al 0,05%.
Cargue 20 microlitros de la primera muestra de antígeno anticuerpo como se demuestra, secando el líquido del otro extremo con un pequeño trozo de papel secante. Inmediatamente después de la carga, haga clic en Grabar para adquirir el número adecuado de fotogramas equivalente a 100 segundos de datos. Al final del período de recopilación de datos, ingrese un nombre de archivo para los datos y haga clic en Aceptar y luego en Muestra para guardar el archivo.
Para analizar los datos de fotometría de masas, abra el archivo de interés y haga clic en Analizar. Haga clic en Cargar para cargar la función de calibración y haga clic en Archivar y guardar resultados como para guardar los datos analizados.
Para obtener las concentraciones relativas de cada especie en la muestra, abra el archivo "eventsFitted.csv", copie los datos de la columna M en el software de trazado y análisis apropiado y use la función Plot/Statistics/Histogram para trazar la distribución de masa molecular. Haga doble clic en el histograma para abrir la ventana Propiedades de trazado, desactive la agrupación automática y seleccione un tamaño de contenedor de 2,5 kiloDaltons.
Para crear los centros de ubicación y los datos de recuentos, haga clic en Aplicar y listo. Para ajustar el histograma con funciones gaussianas, seleccione las columnas Bin Centers y Counts y haga clic en las funciones de menú Análisis/Picos y Línea de base/Ajuste de picos múltiples . Haga doble clic para indicar las posiciones de pico aproximadas en el gráfico de distribución y haga clic en Abrir NLFit.
Marque las casillas de verificación Fijas para los centros "xc" y establezca sus valores en las masas moleculares esperadas del anticuerpo libre y los complejos antígeno-anticuerpo simple y doble. Marque la opción Compartir para los parámetros de ancho y haga clic en Ajustar.
Los valores de altura máxima ajustados de los componentes gaussianos representan la concentración relativa de cada especie en la muestra. Luego, use la ecuación para calcular la fracción de concentración de cada especie a partir de los valores de altura máxima.
Este artículo describe un método para detectar interacciones antígeno-anticuerpo utilizando fotometría de masas. La técnica permite evaluar la afinidad entre anticuerpos y antígenos mediante mediciones de dispersión de luz de los complejos.
La fotometría de masas permite el análisis sin marcado y a nivel de molécula individual de las interacciones entre antígenos y anticuerpos, proporcionando mediciones directas de la estequiometría de unión y la formación de complejos. Esta capacidad apoya la validación temprana de dianas al ofrecer datos cuantitativos de afinidad sin artefactos derivados de inmovilización o marcado. El método acelera la identificación de compuestos activos al ofrecer información en tiempo real sobre la heterogeneidad de unión y la estabilidad de los complejos.
La fotometría de masas se integra en el continuo de descubrimiento desde la validación inicial del objetivo hasta la optimización del fármaco líder, ofreciendo una confirmación ortogonal de los datos de unión generados por SPR o ELISA.
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Última actualización: 29 agosto 2026