JoVE Encyclopedia of Experiments
Técnicas biológicas
0 vistas • 4:26 min • July 8th, 2025
Para estudiar las interacciones proteína-proteína específicas en bacterias vivas utilizando microscopía de imágenes de fluorescencia de por vida, FLIM, combinado con la transferencia de energía de resonancia de Förster, FRET, comienza con una suspensión bacteriana recombinante. Las bacterias expresan proteínas citoplasmáticas específicas involucradas en las vías metabólicas, marcadas con proteínas fluorescentes donantes y aceptoras adecuadas para FRET.
Detecte la suspensión bacteriana en una almohadilla de agarosa, que inmoviliza las bacterias en un portaobjetos de microscopio. Coloque un cubreobjetos en el portaobjetos y selle.
Coloque el portaobjetos en la platina de un microscopio de barrido invertido de excitación de dos fotones para microscopía FLIM-FRET. Use una lámpara de fluorescencia para seleccionar y escanear una región de interés en la monocapa bacteriana.
La interacción entre las proteínas citoplasmáticas expresadas acerca las proteínas fluorescentes donantes y aceptoras en la orientación adecuada. Tras la iluminación láser con una longitud de onda adecuada, la proteína fluorescente donante se excita.
La proximidad de las proteínas fluorescentes desencadena FRET, lo que lleva a una transferencia de energía no radiativa de las proteínas fluorescentes donantes a las aceptoras, que se excitan y finalmente vuelven al estado fundamental, emitiendo fluorescencia.
La transferencia de energía no radiativa reduce el tiempo que tarda la proteína fluorescente del donante excitado en volver a su estado fundamental, el tiempo de vida de la fluorescencia del donante, medido por FLIM. La disminución en la vida media de fluorescencia de la proteína fluorescente donante debido a FRET confirma la interacción proteína-proteína en las bacterias.
Coloque un portaobjetos de vidrio de microscopio sobre una superficie horizontal plana y coloque dos portaobjetos de vidrio cubiertos con dos capas de cinta adhesiva a su alrededor. Pipetea una gota de 70 microlitros de agarosa derretida al 1% en el portaobjetos de vidrio y coloca un cuarto portaobjetos encima para aplanar la gota de agarosa. Presione suavemente durante aproximadamente un minuto.
Retire el portaobjetos superior y deje caer unos tres microlitros de bacterias en tres o cuatro puntos en diferentes lugares de la almohadilla de agarosa. Cubra la almohadilla de agarosa con un cubreobjetos de vidrio de microscopía y fíjela con parafina derretida para sellarla en el portaobjetos de vidrio, comenzando por las cuatro esquinas.
Coloque el portaobjetos de microscopía en la platina, con el cubreobjetos hacia el objetivo. Gire la torreta del cubo de filtro para seleccionar el cubo eGFP y abra el obturador de la lámpara de fluorescencia. Luego, envíe la luz de fluorescencia hacia el ocular del microscopio. Enfoque el objetivo en las bacterias con la perilla del microscopio.
Seleccione una región de interés en la muestra utilizando el joystick que controla la platina motorizada. Envíe la ruta de emisión de fluorescencia hacia el detector, luego, gire hacia atrás la torreta del cubo de filtro para seleccionar el cubo dicroico para el láser de 930 nanómetros y configure la potencia del láser en 20 milivatios. Establezca el tamaño de la región de interés en 30 micrómetros, lo que ajusta el voltaje que opera los espejos galvo y define el rango de sus movimientos.
Encienda el detector y comience a escanear la muestra. Elija el campo de visión para la imagen, moviendo finalmente la platina desde la interfaz de la computadora. Esto se puede hacer en la configuración moviendo la cruz en la imagen en el software de control del microscopio que definirá el nuevo centro de la imagen y presionando "Mover escenario".
Un buen campo de visión para la adquisición debe contener de 10 a 30 bacterias inmóviles, todas enfocadas. Si está interesado en extraer datos FLIM-FRET de células individuales, asegúrese de que las bacterias estén bien individualizadas.
Este artículo describe un método para estudiar interacciones proteína-proteína en bacterias vivas utilizando microscopía de imagen de tiempo de vida de fluorescencia (FLIM) combinada con transferencia de energía por resonancia de Förster (FRET). El enfoque consiste en inmovilizar bacterias que expresan proteínas marcadas con fluorescencia sobre un portaobjetos para microscopio y analizar sus interacciones mediante cambios en el tiempo de vida de la fluorescencia.
FLIM-FRET permite la evaluación cuantitativa de interacciones proteína-proteína en sistemas bacterianos vivos, proporcionando información mecanicista sobre la regulación de las vías metabólicas. Este enfoque apoya la validación de objetivos al confirmar asociaciones funcionales de proteínas en un contexto celular nativo, reduciendo la ambigüedad en las pruebas de hipótesis en etapas iniciales. La técnica ofrece confianza predictiva para reducir riesgos en objetivos implicados en el metabolismo bacteriano, orientando la priorización en programas de descubrimiento de agentes antimicrobianos.
FLIM-FRET se integra en el continuo de descubrimiento desde la prueba de hipótesis sobre dianas hasta la identificación de compuestos iniciales, particularmente para programas antimicrobianos que tienen como objetivo las vías metabólicas bacterianas.
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Última actualización: 22 agosto 2026