Imágenes de una sola molécula para visualizar el ensamblaje de condensados de proteínas de fusión en cortinas de ADN

0 vistas4:06 min • July 8th, 2025

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Una proteína de fusión oncogénica quimérica contiene el dominio N-terminal de baja complejidad, LCD, de una proteína de unión al ARN fusionada con el dominio de unión al ADN, DBD, de una proteína del factor de transcripción. Estas proteínas forman un condensado de proteínas, que recluta ARN polimerasa-II e impulsa la oncogénesis.

Para visualizar el ensamblaje de condensados de proteínas mediante imágenes de una sola molécula, comience con una celda de flujo de ADN, un portaobjetos de vidrio de sílice fundida equipado con puertos de inyección de entrada y salida. La superficie de la celda de flujo está recubierta con una bicapa lipídica biotinilada para proteger la superficie y fabricada con una barrera en zigzag.

Conéctalo a un sistema microfluídico. Introduzca una solución de estreptavidina, que se une a su ligando de afinidad de alta unión, la biotina, en la capa lipídica. Inyecte ADN lambda bicatenario marcado con biotina, que contiene múltiples repeticiones de secuencias de unión a proteínas de fusión. La estreptavidina de la bicapa lipídica se une a la biotina del ADN y une el ADN lambda a la bicapa.

Enjuague con un tampón adecuado. La fuerza hidrodinámica de su flujo endereza las moléculas de ADN ancladas, lo que les permite colgar como cortinas de ADN sobre las barreras.

Coloque la celda de flujo bajo un microscopio de fluorescencia. Inyecte una solución de fluoróforos verdes que se unen al ADN. A continuación, inyecte una solución de proteína de fusión etiquetada con fluoróforo magenta de unión a proteínas a través de su dominio LCD e incube.

Las proteínas de fusión marcadas se unen a la secuencia diana en el ADN lambda para formar condensados a lo largo del ADN. Tras la excitación, los fluoróforos unidos al ADN y a las proteínas emiten fluorescencia.

Los condensados de proteínas de fusión aparecen como puntos de color magenta en el ADN bicatenario marcado con fluorescencia verde.

Para obtener imágenes de la formación de condensación de EWS-FLI1 en cortinas de ADN, abra el software de imágenes y busque y marque las posiciones de los nueve patrones en zig-zag en campo claro. Luego, encienda el flujo a 0,2 mililitros por minuto para teñir el ADN con tinte de ADN bicatenario durante 10 minutos.

A continuación, diluya la proteína mCherry-EWS-FLI1 con el tampón de imagen a una concentración de 100 nanomoles y 100 microlitros. Luego, cargue la muestra de proteína a través de la válvula con una jeringa de vidrio de 100 microlitros y cambie el caudal a 0,4 mililitros por minuto.

Después de encender el láser de 488 nanómetros, escanee previamente cada región para verificar el estado de distribución del ADN y seleccione la región en la que las moléculas de ADN se distribuyen uniformemente. Luego, configure la potencia del láser en 10% para el láser de 488 nanómetros y 20% para el láser de 561 nanómetros, y usando el medidor de potencia, mida la potencia real del láser cerca del prisma.

Comience a adquirir imágenes a intervalos de dos segundos con láseres de 488 y 561 nanómetros simultáneamente. Luego, cambie la válvula del modo manual al modo de inyección para permitir que el tampón de imágenes enjuague la muestra de proteína en la celda de flujo después de 60 segundos.

Para eliminar el EWS-FLI1 libre, siga lavando la celda de flujo con el tampón de imágenes durante cinco minutos con solo el láser de 561 nanómetros encendido. Luego, detenga el flujo e incube a 37 grados centígrados durante 10 minutos.

Después de 10 minutos, encienda el flujo a 0,4 mililitros por minuto para permitir que el ADN se extienda y adquiera imágenes a intervalos de dos segundos entre diferentes fotogramas para obtener datos de alto rendimiento de la formación de condensado EWS-FLI1.

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Última actualización: 15 agosto 2026