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Los mastocitos, glóbulos blancos que contienen gránulos citoplasmáticos llenos de mediadores inflamatorios, juegan un papel importante en las respuestas inmunitarias innatas y adaptativas.
Para aislar los mastocitos de tipo tejido conectivo de la cavidad peritoneal, un espacio lleno de líquido que alberga órganos abdominales, tome un ratón sacrificado fijado en posición supina. Hacer una incisión longitudinal hasta el esternón, exponiendo la pared abdominal.
La cavidad peritoneal se encuentra debajo de la pared abdominal y contiene líquido que alberga varias células inmunitarias, incluidos macrófagos, linfocitos, leucocitos polimorfonucleares y mastocitos.
Para aislar las células mediante lavado peritoneal, aspirando el contenido intraperitoneal, inyecte un medio de crecimiento helado en la cavidad peritoneal sin perforar los órganos, evitando fugas de sangre. El medio frío ayuda a mantener la viabilidad celular.
Agite con cuidado el ratón durante un tiempo adecuado, mezclando las células inmunitarias con el medio. Inserte una jeringa vacía en la cavidad. Aspire lentamente el medio, recuperando la mayor parte del líquido inyectado para un mejor rendimiento celular.
Transfiera la suspensión celular a un tubo de recolección. Centrifugar para precipitar las células en forma de pellet. Deseche el sobrenadante. Vuelva a suspender el gránulo en un medio apropiado.
Coloque las células en placas e incube en condiciones fisiológicas, permitiendo que las células se adhieran al recipiente de cultivo. Agregue citocinas específicas que se unen a sus receptores en los mastocitos, induciendo la proliferación celular.
Las células proliferadas están listas para ensayos posteriores.
Para comenzar este procedimiento, rocíe el ratón sacrificado con etanol al 70% y fíjelo en un bloque de espuma con el lado dorsal hacia abajo con alfileres. Con unas tijeras de filo romo, retire la piel sobre el abdomen del ratón y evite dañar la cavidad peritoneal.
A continuación, inyecte 7 mililitros de medio RPMI helado en la cavidad peritoneal insertando cuidadosamente una aguja de calibre 27 en el peritoneo. No perfore ningún órgano y use un punto en la región de la grasa del epidídimo para reducir el riesgo de perforación de un órgano.
Después de la inyección, agite el ratón durante 1 minuto para separar las células peritoneales en el medio RPMI. No agite el ratón con demasiada fuerza para evitar dañar los órganos internos y contaminar la cavidad peritoneal con sangre. Luego, reutilice la jeringa equipándola con una nueva cánula de calibre 20.
Mueva los órganos internos hacia un lado inclinando el bloque de espuma y golpeándolo suavemente en el banco para facilitar la aspiración media desde el otro lado. Posteriormente, inserte una aguja de calibre 20, biselada hacia arriba, para aspirar el líquido del abdomen de manera suave y lenta para evitar la obstrucción de los órganos internos.
Recoja la mayor cantidad de líquido posible. Luego, retire la aguja de la jeringa y transfiera la suspensión celular recolectada en un tubo de recolección con hielo. Deseche un tubo de muestra si hay contaminación visible de la sangre.
Centrifugar el tubo con suspensión de células limpias a 300 x g durante 5 minutos. Bajo una capucha estéril, aspire el sobrenadante. Vuelva a suspender los gránulos de muestra en medio PMC frío y transfiera la suspensión celular a un matraz de cultivo celular de 25 centímetros cuadrados.
Posteriormente, agregue los factores de crecimiento IL3 y SCF a las concentraciones finales de 10 nanogramos por mililitro y 30 nanogramos por mililitro respectivamente. Incubar las células durante aproximadamente 48 horas a 37 grados centígrados, hasta el siguiente procedimiento.