$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Comience con un cultivo de células madre de médula ósea.
Introducir el tampón tripsina-EDTA para separar las células y romper los grumos celulares, formando una suspensión unicelular.
Centrifugar, luego retirar el sobrenadante. Vuelva a suspender el gránulo con un medio fresco.
Transfiera la suspensión a una jeringa y conéctela a una unidad de filtro de membrana.
Empuje el émbolo y deseche el medio que contiene filtrado.
Desconecte el filtro. Llene la jeringa con un medio nuevo. Vuelva a conectar el filtro y empuje rápidamente el émbolo.
La presión del líquido obliga a la célula hacia los poros del filtro.
Esto produce una vesícula de membrana plasmática esférica o PMV.
Estas vesículas contienen componentes celulares y orgánulos rodeados por la membrana.
Examine el filtrado bajo un microscopio de contraste de fase invertido para observar vesículas esféricas translúcidas.
Las dimensiones de las vesículas coinciden con el tamaño de poro de la membrana del filtro, lo que confirma la generación de PMV.
Para generar los PMV, primero, cultive PMSC de ratón en medio de cultivo DMEM completo en un pocillo de una placa de seis pocillos en una incubadora humidificada a 37 grados Celsius y 5% de dióxido de carbono. Cuando las células hayan alcanzado el 90% de confluencia, enjuague el pocillo con 0,5 mililitros de PBS sin calcio y separe las células con 0,5 mililitros de tripsina-EDTA al 0,25%.
Después de tres minutos a 37 grados centígrados, golpee la placa con la palma de la mano varias veces para facilitar la disociación celular y detener la digestión con 1 mililitro de medio de cultivo. Transfiera las células a un tubo cónico de 5 mililitros para centrifugar y vuelva a suspender el gránulo en 4 mililitros de medio de cultivo fresco. Luego, divida las células entre dos pocillos de una nueva placa de seis pocillos y devuelva la placa a la incubadora de cultivos celulares durante 24 horas.
Al día siguiente, coseche las células de un pocillo mediante digestión de tripsina, como se acaba de demostrar, resuspendiendo el pellet en 0,5 mililitros de medio de cultivo fresco después de la recolección por centrifugación. Cargue las células en una jeringa de insulina de 1 mililitro y conecte la jeringa a una unidad de filtro. Presione rápidamente el émbolo para exprimir las celdas a través del filtro y deseche el medio extruido. Luego, cargue y dispense 0,5 mililitros de medio de cultivo adicional a través del filtro, como se acaba de demostrar, recogiendo el medio de la segunda extrusión.
Siembre 150 microlitros del medio recolectado en un plato con fondo de vidrio de 35 mililitros y deje que las vesículas se asienten durante unos 10 minutos. Luego, confirme la presencia de PMV bajo un microscopio de contraste de fase invertido equipado con una cámara CCD que utiliza una lente de objetivo de 20 veces.