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Neurociencia
0 vistas • 3:33 min • July 8th, 2025
Comience con un cultivo de neuroesferas, grupos flotantes de células progenitoras neuroepiteliales.
Transfiera estas neuroesferas a una hoja de inclusión.
Retire los medios. Agregue una gota de matriz de membrana extracelular que contenga proteínas y factores de crecimiento a cada neurosfera.
Incubar para que la matriz se solidifique, incrustando las neuroesferas dentro de ella.
Ahora, transfiera las neuroesferas incrustadas en la matriz utilizando medios de neuroesferas a una placa de cultivo que contenga medios de neuroesferas.
incubar. La matriz de la membrana extracelular y sus constituyentes facilitan la diferenciación de las células progenitoras neuroepiteliales en células neuroepiteliales que proliferan y forman lúmenes llenos de líquido.
Después de la incubación, transfiera las neuroesferas a un matraz giratorio que contiene medios organoides cerebrales precalentados. Incubar con agitación para mejorar la difusión de oxígeno y nutrientes, promoviendo el crecimiento celular.
Los factores de crecimiento y los inhibidores de moléculas pequeñas en los medios promueven la diferenciación neuronal y se convierten en células de regiones específicas del cerebro, formando organoides cerebrales maduros.
Para comenzar este procedimiento, recolecte las neuroesferas con una micropipeta de 200 microlitros, utilizando una punta de 2 milímetros previamente cortada con tijeras estériles. A continuación, coloque las neuroesferas aproximadamente a 5 milímetros de distancia entre sí en una película de parafina en un plato de 100 milímetros y retire con cuidado la mayor cantidad posible del medio restante. Luego, agregue una gota de matriz EHS en cada neuroesfera.
Incube las gotas de matriz EHS con las neuroesferas durante 15 minutos a 37 grados centígrados. Después de eso, lave cuidadosamente las neuroesferas de la película de parafina enjuagándolas con medio neurosphere. Posteriormente, incube las neuroesferas durante los próximos cuatro días y agregue 2 mililitros de medio neurosférico fresco el segundo día.
En este procedimiento, agregue 100 mililitros de medio organoide cerebral a cada matraz giratorio a través de sus brazos laterales y precaliente el medio en la incubadora a 37 grados centígrados durante al menos 20 minutos. Luego, asegúrese de que todas las neuroesferas estén separadas. Si dos o más están conectados a través de una matriz EHS, sepárelos cortando la matriz de conexión con un bisturí.
Configure un programa de agitación a 25 RPM. Transfiera con cuidado las neuroesferas incrustadas en la matriz EHS a los matraces giratorios que contienen 100 mililitros de medio organoide. A continuación, coloque los matraces giratorios en una plataforma de agitación magnética en la incubadora durante 14 días a 37 grados centígrados. Este es el día cero de la cultura de los organoides. Cambie el medio una vez a la semana quitando la mitad del medio y agregando la misma cantidad de medio fresco.
Este artículo describe un método para diferenciar células progenitoras neuroepiteliales en organoides cerebrales maduros utilizando neuroesferas y una matriz extracelular. El proceso implica la inclusión de neuroesferas en una matriz, su incubación y posterior transferencia a un matraz agitador para mejorar el crecimiento.
Los organoides cerebrales humanos derivados de iPSC proporcionan un sistema fisiológicamente relevante para modelar el desarrollo neurotemprano y los mecanismos de enfermedad. Este método in vitro permite la validación de dianas y el cribado fenotípico en un contexto celular humano relevante para la enfermedad, apoyando la desactivación de riesgos mecanicistas en las líneas de descubrimiento. El enfoque mejora la confianza predictiva para candidatos terapéuticos dirigidos al SNC al reproducir la diferenciación específica de región y la organización semejante a tejido.
El método se integra en el continuo de descubrimiento desde la validación del blanco hasta la identificación de compuestos prometedores y la evaluación preclínica, proporcionando un puente relevante para el ser humano entre ensayos reduccionistas y modelos in vivo.
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Última actualización: 29 agosto 2026