Diferenciación de células madre pluripotentes inducidas humanas en neuronas en matrices de microelectrodos

0 vistas4:33 min • July 8th, 2025

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Tomemos células madre pluripotentes transducidas inducidas por humanos o hiPSC, que sobreexpresan neurogenina-2, impulsadas por el sistema antibiótico inducible por doxiciclina.

Transfiéralos a las áreas de electrodos activos recubiertos de proteínas de adhesión en los pocillos de una matriz de microelectrodos de pocillos múltiples.

Permita que las hiPSC se adhieran a las áreas de electrodos activos recubiertos.

Agregue medios suplementados con doxiciclina, que induce la sobreexpresión de neurogenina-2, un factor de transcripción neuronal específico.

La neurogenina-2 desencadena vías moleculares y conduce a la diferenciación de hiPSC en células precursoras neuronales, mientras que los componentes de los medios ayudan a la supervivencia celular.

Introduzca los astrocitos en los pocillos de la matriz de microelectrodos, donde se adhieren al área activa del electrodo.

Reemplace los medios con medios neurobasales que contengan factores de crecimiento neurogénicos, doxiciclina y un inhibidor del crecimiento celular.

El inhibidor previene la proliferación de astrocitos y elimina las hiPSC indiferenciadas.

Con el tiempo, la expresión sostenida de neurogenina-2 y los factores de crecimiento impulsan la diferenciación de las células precursoras neuronales en neuronas.

Además, reemplace los medios con medios neurobasales que contengan suero para la supervivencia de los astrocitos.

Los astrocitos secretan factores de crecimiento que promueven la maduración de las neuronas y la formación de sinapsis, formando una red neuronal.

Para los MEA de seis pocillos, diluya las células para obtener una suspensión celular de 7,5 x 10 5 células por mililitro. Aspire la laminina diluida de los MEA de seis pocillos. Para los MEA de seis pocillos, coloque las celdas agregando 100 microlitros de suspensión celular al área del electrodo activo en cada pocillo.

A continuación, coloque los MEA de seis pocillos en una incubadora humidificada a 37 grados centígrados. Después de dos horas, agregue cuidadosamente 500 microlitros del medio E8 preparado a cada pocillo de los MEA de seis pocillos. Posteriormente, coloque los MEA de seis pocillos durante la noche en una incubadora humidificada a 37 grados Celsius.

El tercer día, caliente la tripsina-EDTA al 0,05% a temperatura ambiente. DPBS caliente en DMEM / F-12 con penicilina-estreptomicina al 1% a 37 grados Celsius. Luego, aspire el medio gastado del cultivo de astrocitos de rata. Lave el cultivo agregando 5 mililitros de DPBS y agítelo suavemente.

Luego, aspire DPBS y agregue 5 mililitros de tripsina-EDTA al 0,05%. Agite la tripsina-EDTA suavemente. Luego, incube las células en una incubadora humidificada a 37 grados Celsius durante 5 a 10 minutos. Posteriormente, verifique bajo el microscopio para examinar si las células están desprendidas.

Separa las últimas celdas golpeando el matraz varias veces. Luego, agregue 5 mililitros de DMEM / F-12 al matraz. Triture las células suavemente dentro del matraz con una pipeta de 10 mililitros. Luego, recoja la suspensión celular en un tubo de 15 mililitros. Gira el tubo a 200 veces g durante ocho minutos.

Después de eso, aspire el sobrenadante y vuelva a suspender las células en 1 mililitro de DMEM / F-12. Determine el número de células por mililitro usando un hemocitómetro.

A continuación, agregue 7.5 x 104 astrocitos a cada pocillo de los MEA de seis pocillos y agregue 2 x 104 astrocitos a cada pocillo de la placa de 24 pocillos. Incube las células durante la noche en una incubadora humidificada a 37 grados centígrados.

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Última actualización: 22 agosto 2026