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Comience con células nerviosas cultivadas en un medio de diferenciación celular.
Agregue nanovarillas de oro al medio.
Incubar para permitir que la célula engullira la nanovarilla a través de un proceso llamado endocitosis.
Estimule las nanovarillas con un láser.
El rayo láser excita los electrones de la superficie en la nanovarilla. Los electrones excitados luego regresan al estado fundamental, liberando energía térmica.
Este calor estimula las células nerviosas para producir proyecciones apoyadas por una proteína citoesquelética específica llamada βIII-tubulina.
Retire el medio gastado.
Arregla las celdas. Añadir un detergente adecuado para permeabilizar la membrana.
Agregue un agente bloqueador para evitar la unión no específica de anticuerpos.
Etiquete las células con anticuerpos primarios que se dirigen a la βIII-tubulina.
Agregue anticuerpos secundarios marcados con fluorescencia que interactúen con los anticuerpos primarios.
Tiñe el núcleo con un tinte fluorescente azul.
Usando microscopía de epifluorescencia, observe células de color rojo con núcleos azules.
Las proyecciones alargadas de la célula indican diferenciación de células nerviosas.
Cultivar las células neuronales NG108-15 en 10 mililitros de medio de cultivo celular en un matraz T75, incubarlo posteriormente a 37 grados centígrados en atmósfera humidificada. Cuando las células sean confluentes entre un 70% y un 80%, cambie el medio por un medio tibio y fresco.
Después de eso, separe mecánicamente las celdas golpeando suavemente el fondo del matraz confluente. Centrifugar una suspensión celular durante cinco minutos a 600 g y volver a suspender el sedimento celular en 2 mililitros de medio de diferenciación celular caliente. Luego, siembre las células en una placa de 96 pocillos, con 200 microlitros de medio de diferenciación celular.
Incubar la muestra durante un día a 37 grados centígrados. Al día siguiente, agregue la solución de nanovarilla de oro e incube durante 24 horas más. En este procedimiento, acople el láser con una fibra óptica monomodo y termínelo con un conector FC. Mida la potencia del láser de salida con un medidor de potencia estándar.
En el día 3 de incubación de nanovarillas, fije el conector FC al pocillo, irradie la muestra y controle a temperatura ambiente durante 1 minuto en una onda continua a diferentes potencias de láser. El día 5, retire el medio de diferenciación celular de la muestra y fíjelo con una solución de formaldehído al 3,7% de volumen por volumen durante 10 minutos.
Luego, permeabilice las células con 0.1% de volumen por volumen Triton X-100 durante 20 minutos. Luego, agregue un 3% de peso por volumen de BSA a la muestra durante 60 minutos para bloquear los sitios de unión a proteínas sin reaccionar. Etiquete la muestra con anti-beta-3-tubulina durante la noche a 4 grados centígrados.
Al día siguiente, incube las células durante 90 minutos en la oscuridad, con un anticuerpo secundario apropiado. Posteriormente, etiquete los núcleos celulares con DAPI durante 10 minutos, luego, obtenga imágenes de la muestra con epifluorescencia o microscopía confocal, utilizando al menos un objetivo de 20x. Elija los filtros del microscopio de acuerdo con el anticuerpo secundario y seleccione el filtro DAPI para visualizar los núcleos celulares.