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Neurociencia
0 vistas • 3:58 min • July 8th, 2025
Comience con un cultivo adherente de células estromales de médula ósea.
Someter a las células a hipoxia, una condición caracterizada por niveles reducidos de oxígeno, durante un tiempo requerido.
Aísle las células preacondicionadas por hipoxia, luego centrifugue y elimine el sobrenadante. Resuspender las células en medios progenitores neuronales que contienen factores de crecimiento neuronal.
Transfiera las células a una placa de cultivo de baja adherencia e incube.
El preacondicionamiento de hipoxia y los factores de crecimiento neuronal inducen la diferenciación de células estromales en progenitores neuronales.
La superficie de la placa de baja adhesión mantiene a los progenitores en suspensión, facilitando su proliferación y agregación en neuroesferas tridimensionales.
Cosecha las neuroesferas, centrifuga y elimina el sobrenadante. Resuspender las células en medios de inducción glial que contienen factores de crecimiento gliales específicos.
Transfiera las neuroesferas a una placa de cultivo recubierta con laminina, un componente de la matriz extracelular, y poli-D-lisina, un polímero sintético cargado positivamente.
La superficie recubierta promueve la adhesión celular, facilitando la unión de la neuroesfera.
Los factores de crecimiento específicos de la glía estimulan la diferenciación de los progenitores neuronales en células similares a las células de Schwann que exhiben la morfología cónica característica de las células de Schwann.
Para el preacondicionamiento hipóxico, primero, suelte la abrazadera del anillo y limpie las partes expuestas con etanol al 70%. Además, desmonte la cámara de hipoxia en componentes y colóquelos en una campana de flujo laminar para esterilizarlos bajo luz ultravioleta durante 15 minutos.
A continuación, lave un cultivo de MSC confluente del 80% al 90% con 10 mililitros de PBS como se acaba de demostrar, y trate los cultivos con medio de crecimiento MSC fresco suplementado con HEPES de 25 milimolares. Coloque el cultivo tratado en la cámara de hipoxia reensamblada y apriete la abrazadera del anillo. Selle los extremos de conexión de la cámara para asegurarse de que no haya fugas de gas y descargue una mezcla de gas de 99% de nitrógeno y 1% de oxígeno en la cámara a un caudal de 10 litros por minuto.
Después de cinco minutos, coloque la cámara en la incubadora de cultivos celulares durante 16 horas. A la mañana siguiente, separe las células como se acaba de demostrar y recójalas por centrifugación. Vuelva a suspender el gránulo en medio progenitor neural y siembre 6 x 103 células por centímetro cuadrado en placas de seis pocillos de baja adherencia para su cultivo a 37 grados Celsius y 5% de CO2 durante 12 días.
Se deben observar esferas de células no adherentes considerables en los días 6 a 7 con más neuroesferas aparentes en cultivos condicionados por hipoxia que en los de normoxia en los días 10 a 12. El día 12, use una pipeta de 10 mililitros para transferir las neuroesferas a un tubo cónico de 15 mililitros y recolecte las neuroesferas por centrifugación.
Vuelva a suspender las esferas en DMEM / F12 y coloque de 5 a 10 neuroesferas por centímetro cuadrado en placas de seis pocillos recubiertas de laminina recubierta de poli-D-lisina en 1,5 mililitros de medio de inducción glial por pocillo. Mantenga el cultivo de células esféricas durante al menos siete días, refrescando el medio cada tres días.
Este estudio investiga la diferenciación de células estromales de la médula ósea en progenitores neuronales y células similares a células de Schwann bajo condiciones de hipoxia. La metodología incluye un preacondicionamiento en hipoxia seguido del cultivo en medios específicos para promover el crecimiento celular y la diferenciación.
Este método permite la generación de células similares a las células de Schwann a partir de células estromales de la médula ósea, proporcionando una fuente ampliable para la modelización de enfermedades del sistema nervioso periférico y aplicaciones en medicina regenerativa. La preacondicionamiento en hipoxia mejora la eficiencia de diferenciación, apoyando la validación de dianas en modelos de dolor neuropático y lesión nerviosa. El enfoque facilita la reducción de riesgos mecanicistas al producir células gliales relevantes para la enfermedad, útiles en cribados preclínicos y en el descubrimiento de biomarcadores.
El método se integra en los flujos de trabajo de descubrimiento temprano al convertir células estromales mesenquimatosas accesibles en células de linaje glial para el cribado de dianas y fenotipos posteriores.
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Última actualización: 29 agosto 2026