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Tomemos los cuerpos embrioides, o EB, derivados de células madre pluripotentes inducidas por humanos. Estos EB están compuestos por tres capas germinales.
Transfiera los EB a una placa de cultivo recubierta de matriz que contenga un medio adecuado e incube.
La matriz permite que los EB se adhieran a la placa de cultivo.
Los factores de crecimiento y los nutrientes en el medio facilitan que las células ectodérmicas de los EB formen agregados neuroepiteliales dispuestos en un patrón circular denominado roseta.
Corta los fragmentos de roseta y sepáralos del plato.
Recoge los fragmentos y gíralos hacia abajo.
Deseche el sobrenadante y vuelva a suspender los fragmentos.
Con una pipeta, mueva los fragmentos hacia arriba y hacia abajo para disociarlos.
Agregue el número deseado de células a una placa de pocillos recubierta de matriz que contenga un medio de diferenciación.
Los componentes del medio de diferenciación facilitan que las células neuroepiteliales se transformen en células neuronales y gliales completamente funcionales, las células primarias del sistema nervioso.
El segundo día, aspire la solución de recubrimiento de matriz estándar de un plato de 60 mililitros previamente preparado y agregue 5 mililitros de medio de inducción neuroepitelial completo o NRI al plato. Trabajando bajo el microscopio estereoscópico con un aumento de 4x y utilizando una pipeta de 200 microlitros, recolecte alrededor de 50 cuerpos embrioides flotantes y transfiéralos a un plato recubierto. Luego, incube el plato a 37 grados centígrados y 5% de dióxido de carbono.
Al día siguiente, el tercer día del procedimiento de diferenciación, revise el plato bajo el microscopio con un aumento de 10x para asegurarse de que todos los cuerpos embrioides estén unidos. Luego, realice suavemente un cambio total de medio con medio NRI completo. Cambie el medio NRI cada dos días hasta el día siete, cuando los agregados neuroepiteliales en forma de roseta deberían ser visibles.
El séptimo día, cubra una placa de 96 pocillos pipeteando 100 microlitros de matriz estándar diluida en medio de cultivo en cada pocillo. El octavo día, corte los agregados en forma de roseta en fragmentos bajo un microscopio estereoscópico con un aumento de 10x en condiciones estériles.
Tenga en cuenta que las rosetas tienden a desprenderse fácilmente del plato cuando se tocan con la aguja. En este caso, desagregue parcialmente la roseta separada con la punta de la aguja. Si las rosetas permanecerán parcialmente unidas, use una pipeta de 200 microlitros para completar el desprendimiento de los fragmentos de roseta.
Los esquejes en roseta requieren buenas habilidades manuales y precisión para evitar cortar derivados no neuroectodérmicos.
A continuación, recoja los fragmentos de roseta y su medio en un tubo cónico de 15 mililitros. Enjuague el plato con 2 mililitros de medio NRI para recuperar todos los fragmentos. Luego, gire los fragmentos de roseta a 112 veces g durante uno o dos minutos.
Después de aspirar el sobrenadante, vuelva a suspender suavemente el sedimento en 1 mililitro de 1x DPBS precalentado sin calcio ni magnesio. Pipetea suavemente los fragmentos de roseta hacia arriba y hacia abajo para disociarlos parcialmente. Luego, agregue 4 mililitros de medio NRI completo y cuente las células usando azul de tripano y un contador de células automatizado.
A continuación, aspire la solución de recubrimiento de matriz estándar de la placa de 96 pocillos y deposite las células en los pocillos a una densidad de alrededor de 15,000 células por centímetro cuadrado en medio NRI. Incube la placa durante la noche a 37 grados centígrados y 5% de dióxido de carbono. El día 10, realice un cambio total de medio utilizando un medio de diferenciación neuronal completo.