Diferenciación de células madre neurales en neuronas mediante un dispositivo microfluídico compartimentado

0 vistas4:12 min • July 8th, 2025

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Tomemos un dispositivo microfluídico que consta de pozos de reservorio conectados a dos compartimentos, uno somático y otro axonal, separados por una barrera de microranuras.

Los compartimentos y microsurcos están recubiertos con un sustrato de cultivo celular para facilitar la adhesión celular.

Agregue un medio de células madre neurales a cada pocillo e incube para preacondicionar el dispositivo para el cultivo celular.

Deseche el papel. Agregue células madre neurales, o NSC, a los pocillos del compartimento somático y permita que las células se adhieran.

Agregue el medio NSC a cada pocillo e incube en una cámara humidificada para evitar la evaporación del medio. Durante la incubación, las NSC proliferan.

Reemplace el medio NSC con un medio de diferenciación neuronal e incube.

Las pequeñas moléculas en el medio inducen la diferenciación de las NSC en neuronas dentro del compartimento somático, con sus axones extendiéndose a través de los microsurcos hacia el compartimento axonal.

Las neuronas diferenciadas con axones extendidos están listas para más ensayos.

Para comenzar, disuelva la poli-l-ornitina en agua destilada de grado de cultivo celular para hacer 600 microlitros de solución por chip. Aspire el PBS restante de los pocillos, asegurándose de que la punta de la pipeta esté alejada de la abertura del canal. Cargue 150 microlitros de solución de trabajo de poli-l-ornitina en el pozo superior derecho.

Espere 90 segundos y agregue 150 microlitros de la solución al pocillo inferior derecho. Espere cinco minutos y repita el proceso de carga con la solución para los pocillos izquierdos. Luego, coloque la bandeja del humidificador con chip a 4 grados centígrados durante la noche. Si usa una placa de Petri, envuélvala con parafilm y colóquela a 4 grados centígrados durante la noche.

A continuación, aspire la solución de los pocillos, asegurándose de que la punta de la pipeta esté colocada lejos de la abertura del canal, y repita la carga de los pocillos derecho e izquierdo con 150 microlitros de agua estéril cada uno dos veces.

Prepare la solución de trabajo de laminina. Cargue los pocillos derecho e izquierdo con 150 microlitros cada uno de la solución de trabajo de laminina. Incube el chip dentro de la bandeja durante dos horas a 37 grados centígrados.

Enjuague el chip con PBS sin calcio ni magnesio. Cargue los pozos derecho e izquierdo con 150 microlitros cada uno de PBS. Espere cinco minutos. Aspire el PBS de los pocillos y enjuague el chip con medios NSC. Cargue los pocillos derecho e izquierdo con 150 microlitros cada uno de los medios NSC. Incube el chip en la bandeja durante la noche en una incubadora a 37 grados Celsius con 5% de CO2 para preacondicionar el chip.

Para sembrar células madre neurales humanas en el chip multicompartimental, primero cuente la concentración celular con un hemocitómetro. Luego, aspira los medios de los pozos. Pipetear 5 microlitros de la solución celular en el pocillo superior derecho, seguido de 5 microlitros en el pocillo inferior derecho.

Use un microscopio para verificar que las células hayan ingresado al canal. Espere cinco minutos para que las células se adhieran a la parte inferior del chip. Pipetee aproximadamente 150 microlitros de medios NSC a los pocillos derecho e izquierdo. Incubar al 5% de CO2, 37 grados centígrados, dentro de un recipiente humidificado adecuado.

Después de 48 horas, aspire los medios NSC de los pocillos y reemplácelos con medios de diferenciación neuronal agregando 150 microlitros a cada pocillo superior y cada pozo inferior. Cultive neuronas dentro de una incubadora de 5% deCO2 y 37 grados Celsius dentro de una bandeja humidificadora.

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Última actualización: 15 agosto 2026