Aislamiento de neuronas marcadas con fluorescencia de un cerebro murino

0 vistas4:35 min • July 8th, 2025

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Tomemos una corteza de ratón transgénica que contiene neuronas fluorescentes que expresan proteínas.

Asegúrelo en un soporte de muestra.

Monte el soporte en la bandeja de vibratomo que contiene aCSF oxigenado para mantener las condiciones fisiológicas del tejido.

Usando los parámetros establecidos, obtenga cortes coronales.

Coloque las rodajas en un soporte de malla que contenga aCSF oxigenado y bloqueadores de actividad para estabilizarlas.

Trate las rodajas con proteasas para digerir la matriz extracelular y aflojar las células.

Lavar con aCSF para eliminar las proteasas.

Transfiera las rodajas a una placa de cultivo con aCSF y suero.

Bajo un microscopio de fluorescencia, diseccionar las regiones de corte que contienen neuronas fluorescentes.

Transfiera los fragmentos disecados a un tubo que contenga líquido cefalorraquídeo y suero.

Disociar mecánicamente el tejido para formar una suspensión unicelular. Transfiera las células a una placa de cultivo que contenga aCSF.

Bajo un microscopio de fluorescencia, use una pipeta capilar para recolectar neuronas fluorescentes.

Dispense estas neuronas en una placa de cultivo que contenga aCSF para su posterior análisis.

Diseccionar el cerebro de un ratón sacrificado abriendo el cráneo con una tijera pequeña y extrayendo el cerebro fresco con fórceps finos sin dañar la corteza. Coloque el cerebro en aCSF enfriado y oxigenado, dejando una piedra de aire unida al 5% de oxígeno equilibrado con dióxido de carbono durante toda la duración del corte.

Coloque el cerebro en el mandril de vibratom y corte secciones coronales o sagitales con un grosor de 300 micras. Reúna tantas secciones como sea necesario para obtener un mínimo de 10 a 50 celdas etiquetadas. Coloque las rodajas en un soporte para rodajas de malla de algodón colocado dentro de un vaso de precipitados para que se bañen en aCSF oxigenado.

Mueva las rodajas al vaso de precipitados que contiene aCSF con bloqueadores de actividad y bloquee durante 15 a 20 minutos a temperatura ambiente mientras burbujea oxígeno con una piedra de aire. Mueva las rodajas al vaso de precipitados que contiene aCSF con la solución de proteasa para realizar una digestión suave a temperatura ambiente. Después de la digestión, lave la proteasa moviendo rodajas de regreso al vaso de precipitados que contiene aCSF con solución bloqueadora de actividad durante 5 a 10 minutos a temperatura ambiente. Sigue burbujeando oxígeno.

A continuación, prepare una placa de Petri de 100 milímetros que contenga aCSF con FBS al 1% a temperatura ambiente y mueva secciones individuales a la placa para la microdisección. Bajo un endoscopio de disección fluorescente, use un par de pinzas finas para microdiseccionar áreas y capas de interés que tengan un mínimo de 10 a 50 células.

Con una pipeta Pasteur, mueva las piezas microdisecadas a un tubo de microcentrífuga de 2 mililitros que contenga aproximadamente 0,8 mililitros de FBS al 1% en una solución de aCSF. Triture el tejido diseccionado en el tubo de microfuga a temperatura ambiente.

Realice aproximadamente 10 pasadas con cada una de las pipetas Pasteur flameadas, comenzando con la más grande y terminando con el diámetro de salida más pequeño. Dispense las células disociadas en una placa de Petri de 100 mililitros que contenga aCSF oxigenada y espere de 5 a 7 minutos para que las células se asienten gradualmente.

Observe la señal GFP y RFP bajo un microscopio de disección. Identifique los desechos examinando la morfología bajo iluminación de campo claro. Una vez que se haya identificado un área de células con pocos desechos, use el capilar y el tubo adjunto para recoger las células bloqueando el extremo de la válvula del tubo con la lengua. Luego, coloque el capilar cerca de las células. Suelte el bloqueo en el capilar y vuelva a bloquearlo rápidamente para capturar la célula mediante la acción capilar.

Mueva el capilar a una placa de Petri de 100 milímetros con aCSF fresco oxigenado y sople suavemente en el tubo mientras observa la punta del capilar bajo óptica de fluorescencia para dispensar las células en el plato. Repita el procedimiento de recolección hasta que se recolecten de 100 a 150 celdas, asegurándose de que los contaminantes como los desechos sean mínimos en la óptica de contraste de interferencia diferencial de campo claro.

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Última actualización: 22 agosto 2026