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Neurociencia
0 vistas • 4:25 min • July 8th, 2025
Tomemos colonias de células madre embrionarias humanas, o hESC, cultivadas en una matriz de soporte.
Aspirar el medio y añadir enzimas que degraden la matriz.
Lavar para eliminar las enzimas. Luego, agregue un medio y una pipeta para desalojar las colonias sueltas, dividiéndolas en grupos más pequeños.
Transfiera los racimos a un medio fresco e incube, permitiendo que los racimos formen agregados esféricos.
Deje que las esferas se asienten y elimine las células muertas.
Incubar con un medio que contenga factor de crecimiento de fibroblastos básico, o bFGF, para la proliferación celular.
Reponer con medios que contengan concentraciones de bFGF que disminuyan gradualmente para facilitar la diferenciación celular.
Introducir un medio de inducción neural, promoviendo la diferenciación de hESC en células madre neurales o NSC, transformando las esferas en organoides que exhiben una estructura neural similar a una roseta.
Agregue antibióticos para prevenir el crecimiento de microbios contaminantes durante el cultivo prolongado.
Las NSC se diferencian en neuronas y glía, desarrollando progresivamente los organoides en una estructura compleja que se asemeja a una corteza cerebral.
Diluya la solución madre de proteasa a una concentración de trabajo agregando 1 mililitro de la solución madre a 5 mililitros de DMEM o medio F12 por cada placa de 6 pocillos de hESC. Aspire y retire los medios de cultivo celular y luego cubra las hESC con la solución de proteasa. Coloque las placas en la incubadora durante 10 a 15 minutos, o hasta que los bordes de las colonias se redondeen y comiencen a separarse de la matriz, pero antes de que se redondeen por completo.
Incline la placa, aspire la solución de proteasa y lave suavemente las células con 2 mililitros de DMEM o F12 por cada pocillo tres veces. Asegúrese de que las colonias permanezcan unidas a la matriz.
Por lo tanto, es fundamental que las piezas de SL tengan el tamaño adecuado. Así que asegúrese de que estén en despaso durante el tiempo adecuado. Si están allí por muy poco tiempo, puede ser muy difícil eliminarlos y separarlos. Y si están allí por mucho tiempo, en realidad pueden desprenderse durante los pasos de lavado.
Agregue de nuevo entre 1 y 1,5 mililitros de medios mTESR nuevos a cada pocillo y lave las células de la placa en un tubo cónico de 50 mililitros mediante un pipeteo suave, aspire y dispense hESC dentro de la placa hasta que alcancen aproximadamente 1/30 de su tamaño original. Ahora, los grupos de colonias se asemejan a piezas de 250 a 350 micrómetros de tamaño.
Transfiera las celdas a un solo matraz T75 de fijación ultrabaja, que contiene mililitros de medios mTESR sin bFGF. Al día siguiente, incline el matraz, de modo que las células vivas se acumulen en la esquina. Si hay una gran cantidad de células que se han adherido al fondo del matraz, use una pipeta de 10 mililitros para transferir las células a un nuevo matraz.
Espere tener una alta población de células muertas durante los primeros días. Una vez que las células se asientan, aspire el medio y las células muertas, dejando aproximadamente 10 mililitros de medio que contengan las células vivas, y agregue 20 mililitros de medio con bajo contenido de bFGF, complementado con 30 nanogramos por mililitro de bFGF. Después de dos días, revise las celdas. La mayoría de las células deben verse sanas y brillantes.
Sin embargo, si más de un tercio de las células parecen oscuras, incline el matraz y reemplace 20 mililitros de medio con 20 mililitros de medio bajo en bFGF complementado con 20 nanogramos por mililitro de bFGF. El día 3, retire la mitad del medio y reemplácelo con 15 mililitros de medio HSC, complementado con 10 nanogramos por mililitro de bFGF.
El día 5, reemplace la mitad del medio con 50 mililitros de medio de inducción neural. Después de eso, cada dos días, reemplace la mitad del medio con medios de inducción neural. Después de tres semanas en cultivo, agregue 100x penicilina-estreptomicina al medio a una concentración final de 1x si lo desea. Actualice la mitad de los medios cada dos días.
Este artículo describe un método para diferenciar células madre embrionarias humanas (hESCs) en células madre neurales (NSCs) y posteriormente en organoides que se asemejan a estructuras de la corteza cerebral. El proceso implica la degradación enzimática de la matriz de soporte, la agrupación celular y el uso de medios específicos para promover la proliferación y diferenciación celular.
Este método permite la generación escalable de organoides cerebrales humanos a partir de células madre embrionarias humanas (hESC), proporcionando un modelo fisiológicamente relevante para la validación temprana de dianas en neurofármacos. Al producir estructuras similares a la corteza con capas neuronales y gliales, este enfoque facilita la eliminación mecanicista de riesgos de candidatos a fármacos del sistema nervioso central mediante cribado fenotípico relevante para el ser humano. El método mejora la confianza predictiva en la toma de decisiones preclínicas al modelar procesos neurodesarrolladores tempranos en un sistema reproducible y libre de suero.
La técnica se integra en la continuidad desde el descubrimiento hasta la fase preclínica, permitiendo la validación de dianas en sistemas neuronales humanos antes de la optimización del fármaco líder y apoyando la producción de organoides listos para ensayos destinados a campañas de cribado posteriores.
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Última actualización: 22 agosto 2026