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Tome un cultivo de células madre pluripotentes inducidas, o iPSC, en medios de mantenimiento que contengan inhibidores de la rho-quinasa.
Los factores de crecimiento mantienen las células indiferenciadas, mientras que los inhibidores de la rhoquinasa mejoran la supervivencia celular.
Reemplace el medio con medios de mantenimiento nuevos, eliminando los inhibidores de la rhoquinasa. Incubar, promoviendo la formación de colonias.
Reemplace regularmente con medios no acondicionados, lo que proporciona un entorno controlado, desencadenando la diferenciación de iPSC en progenitores neurales y luego células endoteliales cerebrales, seguidas de proliferación celular.
Reemplazar con medios de células endoteliales que contengan ácido retinoico y factores de crecimiento de fibroblastos. Incubar.
Los factores de crecimiento de fibroblastos facilitan la proliferación celular, mientras que el ácido retinoico promueve la maduración de las células endoteliales cerebrales.
Agregue enzimas proteolíticas para separar las células. Recoge las células y centrifuga. Deseche el sobrenadante.
Vuelva a suspender las células en medios endoteliales y siembre en un inserto de membrana de múltiples pocillos recubierto con colágeno y fibronectina.
El pocillo contiene medios endoteliales. Incubar para la adhesión selectiva de células endoteliales cerebrales.
Reemplace el medio con medios endoteliales no suplementados para experimentos adicionales.
Resuspender 7,5 x 10 5 células en 12 mililitros de medio de mantenimiento de células madre y 10 inhibidores micromolares de ROCK. Aspire la matriz de un matraz T75 y transfiera la suspensión celular al matraz. Agite el matraz para distribuir las células y colóquelo en la incubadora.
Refresque los medios todos los días durante los próximos dos días para eliminar el inhibidor de ROCK y apoyar el crecimiento de colonias de células madre. Al tercer día, comience la diferenciación cambiando los medios a un medio no condicionado.
Cambie el medio diariamente durante los próximos cinco días. Seis días después de comenzar la diferenciación, expanda selectivamente la población de células endoteliales cambiando a células endoteliales o medio EC con 20 nanogramos por mililitro bFGF y 10 ácido retinoico micromolar. Incube las células durante dos días.
Prepare la solución de colágeno IV y fibronectina de acuerdo con las instrucciones del manuscrito y utilícela para recubrir placas de cultivo celular. Aspire el medio EC de las células y agregue 12 mililitros de reactivo de disociación celular. Incube el matraz a 37 grados centígrados hasta que el 90% de las células se hayan desprendido.
Durante el tiempo de incubación, retire la solución de recubrimiento de las placas previamente preparadas y déjelas secar en una campana estéril. Una vez que las células se hayan desprendido, use una pipeta de 10 mililitros para crear una suspensión unicelular.
Transfiera las células a un tubo de 50 mililitros y dilúyalas con un volumen igual de medio libre de suero endotelial humano. Luego, cuente las células con un hemocitómetro. Peletizar las células a 1.500 g durante 10 minutos. Luego vuelva a suspenderlos en medio EC recién preparado con bFGF y ácido retinoico para una concentración de 2 millones de células por mililitro.
Agregue 500 microlitros de la suspensión celular en la parte superior de un inserto de 12 pocillos y 1,5 mililitros de medio en la parte inferior. Distribuya las células uniformemente por el inserto e incube la placa a 37 grados centígrados y 5% de dióxido de carbono. Al día siguiente, cambie el medio a EC sin bFGF ni ácido retinoico.