Aislamiento de células madre derivadas del tejido adiposo periaórtico murino

0 vistas3:52 min • July 8th, 2025

Tomemos como ejemplo los tejidos adiposos periaórticos de ratón transgénicos recolectados que contienen células madre derivadas de tejido adiposo que expresan proteínas fluorescentes descendientes de células de la cresta neural, o NCC.

Agregue medios de digestión y pique los tejidos.

Transfiera el tejido picado con el medio de digestión a un tubo. Disociar mecánicamente los fragmentos.

incubar. La colagenasa en el medio digiere la matriz extracelular del tejido, liberando células madre, adipocitos y fibroblastos.

Agregue medios que contengan suero para detener la actividad de la colagenasa. Centrifugar y desechar el sobrenadante que contiene los adipocitos.

Vuelva a suspender las celdas en el medio y filtre para eliminar los agregados.

Centrifugar el filtrado y eliminar el sobrenadante. Vuelva a suspender las células en el tampón de lisis de eritrocitos para lisar los eritrocitos.

Agregue un tampón que contenga suero para detener la lisis. Centrifugar y desechar el sobrenadante.

Vuelva a suspender las celdas en el búfer.

Realice la clasificación de células activadas por fluorescencia para aislar células madre fluorescentes.

Las células madre aisladas se pueden utilizar para otros experimentos.

Transfiera el tejido adiposo recolectado a un nuevo tubo de microcentrífuga de 2 mililitros, que contenga 1 mililitro de medio de digestión recién preparado, y use tijeras quirúrgicas para picar los tejidos. Transfiera la suspensión de tejido a un tubo de 50 mililitros que contenga 9 mililitros de medio de digestión fresco y use una pipeta de 1 mililitro para triturar los tejidos 10 veces.

Cuando se haya obtenido una solución homogénea, incubar el tubo durante 30 a 45 minutos a 37 grados centígrados y 100 revoluciones por minuto, revisando cada 5 a 10 minutos para evitar la sobredigestión. Cuando se puede observar una solución de tejido adiposo homogéneo de color amarillo claro al girar suavemente el tubo, detenga la digestión con 5 mililitros de HDMEM suplementados con suero bovino fetal al 10%. Después de una mezcla completa, centrifugar la muestra de tejido adiposo.

La fracción de células vasculares estromales será visible como un gránulo marrón. Vuelva a suspender el pellet en 10 mililitros de medio de cultivo y filtre la suspensión celular a través de un colador celular de 70 micrómetros.

Recoja las células mediante otra centrifugación y vuelva a suspender suavemente el gránulo en 5 mililitros de tampón de lisis de eritrocitos. Transfiera la suspensión a un tubo de 15 milímetros. Después de 10 minutos, detenga la reacción con dos centrifugaciones en 10 mililitros de PBS, suplementadas con suero bovino fetal al 1%.

Después de la segunda centrifugación, vuelva a suspender el gránulo en 5 mililitros de medio de cultivo en hielo y recoja las células con una centrifugación final. Luego, vuelva a suspender las celdas en 5 mililitros de tampón FACS para contar.

Para configurar un cultivo NCADSC después de su aislamiento por FACS de acuerdo con los protocolos estándar, coloque las células a una concentración de 5 x 103 células por cm2 en cada pocillo, una placa de cultivo de 12 pocillos en medio de cultivo completo, a 37 grados Celsius y dióxido de carbono al 5% durante 20 a 24 horas. Al día siguiente, lave las células con PBS a 37 grados Celsius y alimente el cultivo con medio de cultivo fresco.

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Última actualización: 29 agosto 2026