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Neurociencia
0 vistas • 3:45 min • July 8th, 2025
Tomemos un cerebro porcino.
Extirpar las meninges, la membrana protectora que cubre el cerebro, para evitar la contaminación de las células meníngeas.
Raspe la materia gris, una región rica en capilares, y recoja el tejido en una placa de cultivo que contenga medios.
Pasar la materia gris a través de una jeringa sin aguja para fragmentar el tejido.
Transfiera los fragmentos a un homogeneizador y homogeneice para desintegrar aún más el tejido, liberando los capilares cerebrales.
Pasar el homogeneizado a través de un filtro con un tamaño de poro específico para retener los capilares, permitiendo que otras células cerebrales fluyan.
Coloque el filtro en una solución que contenga enzimas y ADNasa.
Las enzimas desprenden las células adherentes, mientras que la ADNasa degrada el ADN contaminante, facilitando el aislamiento de capilares puros.
Lave los capilares del filtro.
Agregue medios que contengan proteínas séricas para inactivar las enzimas.
Transfiera los capilares a un tubo, centrifugue y retire el sobrenadante. Vuelva a suspender los capilares puros en medios nuevos para su posterior análisis.
Para comenzar este procedimiento, coloque los cerebros en un banco de flujo estéril y lávelos suavemente con 1 litro de PBS en un vaso de precipitados colocado sobre hielo. Luego, retire con cuidado las meninges de cada cerebro con fórceps de punta fina. Con un bisturí, raspe la materia gris de los cerebros uno a la vez y transfiera el material aislado a placas de Petri que contienen 20 mililitros de DMEM / F12 colocados en hielo.
Para la fragmentación inicial, pase el material de materia gris a través de una jeringa de 50 mililitros sin la aguja. Repita el procedimiento para todos los cerebros y reúna el material de materia gris recolectado. Transfiera el material de materia gris aislado con medio DMEM / F12 al tubo de molienda de un homogeneizador de tejido manual. Homogeneice el material haciendo 8 trazos hacia arriba y hacia abajo con un mortero suelto, seguidos de 8 movimientos hacia arriba y hacia abajo con un mortero apretado.
A continuación, aísle los capilares filtrando el homogeneizado con una botella de tapa azul de 500 mililitros con portafiltros y malla de filtro de 140 micras. Coloque los filtros que contienen capilares en placas de Petri con la solución de digestión. Posteriormente, incube las placas de Petri a 37 grados centígrados durante una hora en un agitador orbital a 180 RPM, o revuélvalas suavemente cada 10 minutos.
Después de una hora, lave los capilares de los filtros con la suspensión de la placa de Petri. Luego, divida la suspensión de los tres platos en dos tubos de 50 mililitros y detenga la digestión agregando 10 mililitros de DMEM / F12 a cada tubo de 50 mililitros.
Centrifugar las suspensiones celulares a 250 veces g, 4 grados centígrados durante 5 minutos. Luego, aspire los sobrenadantes y vuelva a suspender cada gránulo en 10 mililitros de DMEM / F12. Luego, agregue otros 20 mililitros de DMEM / F12 a cada tubo.
Este artículo presenta un protocolo mejorado para aislar capilares de cerebros porcinos frescos y establecer un modelo in vitro de la barrera hematoencefálica (BHE). El método enfatiza la eliminación cuidadosa de las meninges, el manejo preciso del tejido y la digestión enzimática para obtener capilares cerebrales puros adecuados para análisis posteriores o aplicaciones en cultivo celular.
El aislamiento confiable de capilares cerebrales porcinos sustenta el desarrollo de modelos in vitro robustos de la barrera hematoencefálica (BHE), un punto de inflexión crítico para el descubrimiento de fármacos del sistema nervioso central (SNC). Preparaciones de capilares de alta pureza permiten la evaluación predictiva de la permeabilidad de compuestos y la reducción mecanicista de riesgos en etapas tempranas del proceso. Esta capacidad favorece la continuidad traslacional y la selección de carteras para programas de neuroterapéuticos.
Este protocolo de aislamiento capilar se sitúa en la interfaz entre el descubrimiento inicial y el desarrollo de ensayos, permitiendo modelos posteriores de la barrera hematoencefálica y flujos de trabajo de cribado de compuestos.
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Última actualización: 29 agosto 2026