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Comience con el tejido periventricular de la médula espinal de una rata adulta, una región rica en células madre/progenitoras neurales.
Transfiera el tejido a una solución que contenga papaína y ADNasa.
La papaína, una enzima proteolítica, escinde la matriz extracelular del tejido, mientras que la ADNasa degrada el ADN contaminante liberado por las células dañadas.
Disociar mecánicamente el tejido para obtener una suspensión unicelular.
Transfiera la suspensión a un tubo y centríquela. Retire el sobrenadante. Vuelva a suspender las células en una solución que contenga proteína de albúmina y un inhibidor de la proteasa.
La albúmina y el inhibidor desactivan la papaína.
Coloque la suspensión celular sobre una solución que contenga albúmina y un inhibidor de la proteasa.
La diferencia de densidades entre las capas forma un gradiente de densidad discontinuo.
Centrifugar para asentar las células intactas, mientras que los fragmentos de membrana celular permanecen en la interfaz.
Deseche el sobrenadante. Vuelva a suspender las células en medios de crecimiento y colóquelas.
Los factores de crecimiento promueven selectivamente la proliferación de las células madre/progenitoras neurales y su agregación en neuroesferas tridimensionales.
Para comenzar el aislamiento de las células madre neurales de rata, use microtijeras para picar el tejido periventricular disecado en trozos de 1 milímetro cúbico. A continuación, prepare el tampón de disociación enzimática agregando primero 5 mililitros de solución salina equilibrada de Earl a un vial de papaína de un kit de disociación de papaína.
Coloque el vial a 37 grados centígrados durante 10 minutos, de modo que la papaína se disuelva por completo y la solución parezca clara. A continuación, agregue 500 microlitros de solución salina equilibrada de Earl al vial de DNasa del kit de disociación y mezcle suavemente.
Agregue 250 microlitros de la solución de ADNasa al vial que contiene papaína y mezcle suavemente. A continuación, agregue el tejido picado, aproximadamente 0,2 gramos, en el vial y colóquelo en una plataforma basculante a 37 grados centígrados durante 45 minutos a una hora.
Después de la incubación, triture la mezcla con una pipeta de 10 mililitros para disociar las piezas de tejido restantes y producir una suspensión celular turbia. Transfiera la suspensión celular a un tubo cónico estéril de 15 mililitros y centrifugue a 300 g durante 5 minutos a temperatura ambiente.
Durante la centrifugación, prepare la solución ovomucoide mezclando 2,7 mililitros de solución salina equilibrada de Earl con 300 microlitros de la solución inhibidora de ovomucoides de albúmina reconstituida en un tubo cónico de 15 mililitros. Agregue 150 microlitros de la solución de ADNasa previamente preparada a la solución ovomucoide y mezcle invirtiendo el tubo.
Deseche el sobrenadante de las células granuladas y vuelva a suspender inmediatamente el sedimento celular en la mezcla diluida de albúmina de ADNasa. A continuación, prepare un gradiente de densidad discontinuo agregando 5 mililitros de solución inhibidora de albúmina a un tubo de 15 mililitros y, con una pipeta de 5 mililitros, coloque suave y lentamente la suspensión celular sobre la solución inhibidora de albúmina.
Centrifugar la muestra a 70 g durante seis minutos a temperatura ambiente. Una vez terminado, deseche el sobrenadante y vuelva a suspender el sedimento celular en 1 mililitro de medio EFH de rata precalentado que se prepara como se describe en el protocolo de texto adjunto.
Cuente la densidad de células vivas con un hemocitómetro y coloque las células en un matraz de cultivo T25 a una densidad de 10 células por microlitro en EFH. Incube los matraces a 37 grados centígrados en dióxido de carbono al 5% y deje que los cultivos crezcan sin ser molestados durante una semana para evitar la agregación de esferas.