Establecimiento de una configuración de célula completa para la obtención de imágenes de calcio de dos fotones de cortes de cerebro

0 vistas3:44 min • July 8th, 2025

Tome una pipeta de estimulación que contenga fluoróforos rojos insensibles al calcio en líquido cefalorraquídeo artificial, o ACSF.

Coloque la pipeta cerca de la neurona diana en un corte de hipocampo.

Coloque una pipeta de parche con un electrodo de registro bañado en un electrolito que contenga fluoróforos indicadores de calcio rojo insensibles al calcio y verdes cerca del objetivo.

Aplique presión positiva constante para perturbar brevemente la superficie del tejido, indicando la proximidad al objetivo.

A medida que se forma el hoyuelo en la membrana neuronal, libere la presión para formar un sello.

Aplique presión negativa para apretar el sello.

Estabilizar el potencial de membrana a un voltaje negativo constante.

Continúe con presión negativa para romper la membrana, permitiendo que los electrolitos que contienen fluoróforo se propaguen dentro de la neurona.

Visualice la fluorescencia roja de la columna dendrítica objetivo y alinee la pipeta de estimulación cerca de ella.

Aplique pulsos eléctricos para abrir los canales de calcio.

Utilice microscopía de dos fotones para visualizar los cambios transitorios en los niveles de calcio según lo indicado por la fluorescencia verde.

En este paso, transfiera una rebanada de hipocampo a un baño bajo el objetivo de un microscopio de dos fotones de escaneo láser. Perfundir continuamente el baño con ACSF oxigenado normal. Luego, use la microscopía de contraste de interferencia diferencial infrarroja para ubicar una celda de interés usando su tamaño, forma y posición.

Después de eso, llene una pipeta estimulante con una solución normal de ACSF que contenga el fluoróforo rojo. Bájelo en la parte superior de la rebanada para que la punta esté en la misma región que la celda de interés. A continuación, llene la pipeta de parche con solución de parche y conéctela a la platina de cabezal. Colóquelo sobre la rebanada de modo que su punta esté directamente encima de la celda de interés.

Posteriormente, coloque una jeringa en la llave de paso de tres vías y conéctela a la pipeta de parche a través de un tubo de plástico. Inyecte presión positiva constante en la pipeta de parche y mantenga la llave de paso en posición cerrada. Baje la pipeta de parche hasta que esté justo encima de la célula objetivo. Al hacer contacto con la membrana celular, elimine la presión girando la llave de paso a la posición abierta.

A continuación, aplique una ligera presión negativa a la pipeta de parche con una jeringa vacía colocada en la llave de paso hasta que la resistencia de la pipeta alcance 1 giga ohmio. En la ventana de prueba de membrana del software de adquisición de datos, sujete la celda a 60 milivoltios negativos. Continúe aplicando presión negativa hasta que la resistencia de la pipeta disminuya y se logre la configuración de toda la celda.

Para registrar los transitorios de calcio dendrítico inducidos por estimulación eléctrica, localice una dendrita de interés utilizando la señal fluorescente roja. Coloque la pipeta estimulante en la superficie de la rebanada por encima de la dendrita de interés. Baje lentamente la pipeta de estimulación de 10 a 15 micrómetros de la dendrita, minimizando el movimiento para evitar perturbar la configuración de toda la célula.

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Última actualización: 29 agosto 2026