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Coloque una retina de ratón de montaje plano en una solución fisiológica dentro de una cámara de grabación.
Con un microscopio, coloque una pipeta de registro sobre la retina. La pipeta contiene un electrodo y se llena con una solución interna.
Aplique presión positiva para evitar la obstrucción de la pipeta, insértela en la retina y luego reduzca la presión para evitar daños en los tejidos.
Avance la pipeta hacia las células amacrinas de estallido estelar, o SAC, que están unidas sinápticamente a otras neuronas.
Acérquese a una célula hasta que se forme un hoyuelo en su membrana. Libere la presión, permitiendo que la membrana se adhiera a la punta.
Utilice una corriente negativa para introducir un parche de membrana en la pipeta.
Aplicar succión para romper la membrana, estableciendo continuidad entre el electrodo y el citoplasma celular, una técnica llamada patch-clamp de células completas.
Para registrar corrientes sinápticas, aplique un voltaje para mantener constante el potencial de membrana del SAC.
Los neurotransmisores liberados por las neuronas unidas sinápticamente desencadenan el flujo de iones a través de los receptores sinápticos SAC, medidos por el electrodo.
En este procedimiento, filtre la solución interna a través de un filtro de jeringa en el filamento de relleno personalizado. Luego, inserte el filamento en una micropipeta recién extraída y dispense la solución interna cerca de la punta hasta que la solución cubra el alambre del electrodo de plata durante más de 5 milímetros. Luego, sujete la micropipeta a un soporte de electrodo con un poste de succión, a través del cual se puede ajustar la presión dentro del electrodo empujando o tirando del émbolo de una jeringa de plástico de 10 mililitros conectada por tubo.
A continuación, ubique la pipeta debajo del objetivo y bájela a unos 100 micrómetros por encima de la retina. En el modo de seguidor de corriente, use la compensación de CC para poner a cero la señal de voltaje de CC permanente. Mida la resistencia de la pipeta en el modo de pinza de corriente inyectando corrientes de onda cuadrada de amplitud fija a través de la pipeta mientras está en el baño. Neutralice la diferencia girando la perilla de acceso R y use la lectura para calcular la resistencia de la pipeta.
Después de eso, lleve lentamente el electrodo a unos 10 micrómetros por encima de la retina. Aplique presión positiva al electrodo. Luego, observe cómo cambia el reflejo a la punta de la pipeta a medida que se acerca a la retina.
Forzar rápida pero suavemente la pipeta en el GCL y reducir la presión positiva inmediatamente. Mueva la pipeta hacia una neurona marcada y evite el contacto con otras neuronas, vasos sanguíneos y pies finales de las células de Muller. Aplique más presión positiva si es necesario para evitar la obstrucción de los electrodos.
A continuación, coloque la punta de la pipeta cerca de la neurona marcada hasta que se vea un hoyuelo. A continuación, libere la presión positiva y deje que la membrana plasmática rebote en la punta de la pipeta. Aplique corrientes negativas de 20 a 120 picoamperios a la pipeta para ayudar a la formación de un sello de giga-ohmios.
Permitir que la membrana celular se recupere después de liberar la presión positiva es importante porque un excelente sellado formado naturalmente entre la membrana y la abertura de la pipeta es importante para preservar la morfología celular después del registro.
Si es necesario, aplique una succión suave para tirar de la membrana plasmática hacia la pipeta. Espere cinco minutos después de la formación del sello para romper la membrana celular para permitir la eliminación de la solución interna derramada por superfusión. Después de que se haya roto la membrana, y mientras está en el modo de pinza actual, encienda el volante del puente y ajústelo con la perilla del eje R. Registre las corrientes postsinápticas excitadoras e inhibitorias en el modo de pinza de voltaje manteniendo la celda en potenciales de inversión.