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Comience con una configuración de electrofisiología que contenga un corte de prosencéfalo de ratón sumergido en un aCSF oxigenado.
aCSF contiene un bloqueador de los canales iónicos que inhibe selectivamente los canales de iones de sodio, evitando la excitación neuronal inducida por el sodio.
Las neuronas corticales expresan proteínas sensoras fluorescentes de detección de glutamato.
Localice una sola neurona presináptica capaz de liberar glutamato, un neurotransmisor excitador, en la sinapsis, una unión donde se conecta con las neuronas postsinápticas.
Coloque un electrodo de estimulación cerca de este botón y aplique corrientes despolarizantes.
Esto excita la neurona presináptica, provocando una afluencia de iones de calcio y facilitando la liberación de glutamato.
Inicie el registro de la intensidad de fluorescencia alrededor del bouton seleccionado.
El glutamato liberado interactúa con las proteínas sensoras y los receptores de las neuronas postsinápticas.
Mientras tanto, ilumine el área seleccionada con luz láser, lo que hace que las proteínas sensoras unidas al glutamato emitan fluorescencia; una intensidad de fluorescencia creciente indica la liberación de glutamato.
Con el tiempo, el glutamato se disocia de las proteínas sensoras y entra en el astrocito, lo que provoca una disminución de la intensidad de la fluorescencia, lo que indica la eliminación del glutamato.
Para visualizar la liberación y la eliminación de glutamato utilizando las unidades XY del microscopio, coloque el bouton positivo para sensor de glutamato probado cerca del centro del campo de visión. Después de detener la adquisición, haga clic en la imagen con el botón izquierdo del mouse para determinar la posición XY del centro del botón en reposo. Se mostrarán las coordenadas XY del cursor establecido.
Utilizando los datos de calibración, calcule las coordenadas del sitio donde se debe enviar el rayo láser para la excitación de la fluorescencia del sensor de glutamato, utilizando las fórmulas indicadas. Para crear una secuencia de un punto en el software de control láser, seleccione el punto en el cuadro Agregar a secuencia en la página Secuencia del software de control láser y establezca las ejecuciones y el retraso de ejecución en 0 y la secuencia que se ejecutará en TLL. A continuación, haga clic en Iniciar secuencia.
En el software de control de la cámara, seleccione los parámetros de imagen adecuados y seleccione Inicio externo para el modo de disparo. Haga clic en Tomar señal en el software de control de la cámara. Luego, inicie el protocolo experimental establecido para el dispositivo de disparo e implemente la prueba del protocolo experimental con la línea de tiempo adecuada para que la cámara adquiera 400 cuadros con una frecuencia de 2,48 kilohercios durante 1 prueba con una frecuencia de repetición de 0,1 hercios o menos.
Para identificar sinapsis patológicas, active las rutinas de elevación y calcule la media de intensidad de fluorescencia y la desviación estándar para la región de interés seleccionada en reposo. Determine y encuadre el área ocupada por píxeles con una intensidad de fluorescencia en reposo mayor que la media más 3 desviaciones estándar, y determine un diámetro virtual en micras, asumiendo una forma circular del área de superumbral.
Represente la intensidad de fluorescencia en función del tiempo como la diferencia entre el valor real de intensidad de fluorescencia y el valor de intensidad de fluorescencia en reposo dividido por el valor de intensidad de fluorescencia en reposo. Determine la amplitud máxima de la respuesta de fluorescencia. Realice un ajuste monoexponencial para la desintegración desde el pico de la respuesta de fluorescencia y determine la constante de tiempo de decaimiento, tau d.
Para estimar la amplitud máxima en una sinapsis dada, seleccione el píxel con el mayor cambio en la intensidad de fluorescencia, que es el mejor indicador de la carga de glutamato presentada a la maquinaria de eliminación de la sinapsis.