JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurociencia
0 vistas • 4:49 min • July 8th, 2025
Comience con un ratón anestesiado y genéticamente alterado con la cabeza asegurada en un adaptador de sujeción de la cabeza.
El cerebro del ratón expresa una proteína fluorescente que permite la detección de actividades neuronales.
Afeite y esterilice secuencialmente el cuero cabelludo antes de abrirlo.
Extraer tejido conectivo para exponer el cráneo.
Marque las áreas objetivo y aplique una capa de pegamento.
Usa un microtaladro para adelgazar el cráneo en el área marcada.
Retire el trozo de cráneo para exponer el cerebro.
Aplique líquido cefalorraquídeo artificial para mantener el cerebro húmedo.
Instale una ventana óptica en el área y séllela con pegamento, que proporciona una base para la fijación de cemento.
Aplique cemento dental negro para bloquear la luz.
Repita el procedimiento en el otro lado del cráneo.
Deje que el animal se recupere.
Para obtener imágenes de la actividad neuronal, coloque el ratón anestesiado asegurado bajo el microscopio y adquiera imágenes.
Confirme la falta de respuesta al pellizco del dedo del pie en un ratón Thy1-GCaMP6s anestesiado de 20 a 25 gramos, 1 y 1/2 a 2 y 1/2 meses de edad y aplique ungüento en los ojos del animal. Coloque el mouse sobre una almohadilla térmica cubierta con un paño estéril y use un adaptador de sujeción de cabeza para ratones para estabilizar la cabeza. Afeite la mayor parte del cuero cabelludo con una navaja de afeitar de doble filo y limpie la piel expuesta con almohadillas de preparación de alcohol estériles secuenciales y exfoliantes con solución de povidona yodada. Luego, use un par de tijeras para hacer un corte rectangular de 2 por 3 milímetros en el cuero cabelludo.
Con un hisopo de algodón, empuje la piel a un lado para crear un área de exposición de más de 3 milímetros de diámetro y use una cuchilla microquirúrgica roma para eliminar suavemente el tejido conectivo adherido al cráneo. Con un taladro dental, marque suavemente un círculo de 3 milímetros de diámetro alrededor del área S1. Después de hacer un círculo similar en el lado izquierdo del cráneo, aplique una capa delgada de superpegamento de cianoacrilato a ambos lados del hueso para proporcionar una base para la aplicación de cemento dental.
Bajo un microscopio de disección, use un microtaladro de alta velocidad para adelgazar una ranura circular en el lado derecho del cráneo alrededor del área S1 para crear un borde liso, aspirando los restos óseos con un vacío según sea necesario. Después de que se haya logrado una profundidad ósea de aproximadamente 2/3, adelgace lenta y cuidadosamente el tercio restante del hueso hasta que un colgajo óseo circular se haya liberado por completo del cráneo circundante. Use un par de pinzas # 5/45 para retirar lenta y cuidadosamente el trozo circular de hueso para exponer la duramadre, teniendo cuidado de no dañar los vasos pilares.
Después de retirar un colgajo óseo del lado izquierdo del cráneo de la misma manera, enjuague la ventana óptica del lado derecho del cráneo con solución salina estéril y verifique si hay imperfecciones bajo un microscopio estereoscópico. Instale la ventana óptica sobre la región de la craneotomía con la parte superior de la ventana apoyada en el cráneo y la parte inferior dentro de la abertura craneotomizada, descansando sobre la duramadre en presencia de líquido cefalorraquídeo. Use el superpegamento de cianoacrilato para sellar la parte superior del borde de la ventana óptica al cráneo.
Cuando el pegamento se haya secado, aplique cemento dental negro en el borde del vidrio, el resto del lado derecho del cráneo expuesto y los márgenes de la herida para bloquear la luz. Luego, instale la ventana óptica izquierda y permita que el animal se recupere con monitoreo hasta la decúbito total. De 7 a 10 días después del procedimiento, coloque al animal anestesiado en el adaptador de sujeción de la cabeza en una almohadilla térmica, bajo un microscopio de dos fotones, teniendo cuidado de que la ventana óptica y el lado derecho del cráneo estén orientados perpendicularmente al eje óptico del microscopio.
Adquiera una imagen de mapa de referencia inicial de la ventana craneal utilizando iluminación de campo claro con un aumento de 4 veces. Después de adquirir múltiples imágenes de la misma región de interés, obtenga imágenes de la dinámica del calcio dentro del área S1 en el hemisferio izquierdo y calcule los cambios en la fluorescencia de cada región de interés en ambos lados del cráneo.
Este artículo describe un protocolo detallado para la obtención de imágenes de la actividad neural en ratones genéticamente modificados mediante un microscopio de dos fotones. El procedimiento implica la creación de una ventana craneal que permite la observación directa de la actividad cerebral, garantizando al mismo tiempo la seguridad y comodidad del animal.
El establecimiento de imágenes confiables de la actividad neuronal en modelos transgénicos apoya la validación de dianas terapéuticas y la reducción del riesgo mecanicista en el descubrimiento de fármacos para el sistema nervioso central. La técnica de ventana craneal permite el monitoreo longitudinal y cuantitativo de la dinámica neuronal, mejorando la confianza predictiva en las hipótesis terapéuticas de etapas iniciales. Este enfoque reduce la incertidumbre biológica al proporcionar lecturas directas y trasladables del compromiso de la diana y la modulación de la vía en sistemas relevantes para la enfermedad.
El método se integra en el continuo de descubrimiento desde la validación inicial del blanco hasta la identificación de compuestos activos y las pruebas de eficacia preclínica, gracias a su capacidad de realizar mediciones cuantitativas repetidas de la actividad neuronal.
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Última actualización: 29 agosto 2026