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Comience con una configuración de electrofisiología que contenga una mosca transgénica inmovilizada con un cerebro expuesto.
Coloque una micropipeta de registro cerca de una neurona postsináptica conectada a una neurona presináptica que coexpresa canales de sodio resistentes a la tetrodotoxina y canales sensibles a la luz roja, y una interneurona con canales de sodio sensibles a la tetrodotoxina.
Aplique una succión suave a la micropipeta para formar un sello hermético con la membrana neuronal.
Luego, aplique una fuerte succión para romper la membrana.
Mantener un potencial celular constante. Introducir tetrodotoxina, que bloquea los canales de sodio en la interneurona, evitando la transmisión de señales desde la interneurona a la neurona postsináptica.
Sin embargo, los canales de sodio resistentes a la tetrodotoxina no se ven afectados, lo que permite que los iones de sodio ingresen a la neurona presináptica.
Ilumina la mosca con los pulsos de luz roja.
Esto estimula los canales sensibles a la luz, lo que permite que los cationes influyan y activen la neurona presináptica.
Esta neurona presináptica transmite directamente una señal a la neurona postsináptica sin involucrar a la interneurona, y la actividad eléctrica resultante confirma la conexión monosináptica.
En el equipo, comience inmediatamente a perfundir la preparación con solución salina de grabación burbujeada con carbogeno. Use un depósito de solución salina alimentado por gravedad colocado sobre la platina del microscopio. Para recoger la solución salina de desecho, use una línea de vacío en un matraz de dos litros.
A continuación, cargue la pipeta de parche con cuatro microlitros de solución de registro interna y conecte la pipeta a un micromanipulador. Luego, ponga a cero el desplazamiento del amplificador y configure el amplificador para que entregue pulsos de prueba. Luego, ajuste la iluminación oblicua IR para obtener una vista clara del cerebro.
Ahora, mientras aplica presión positiva a la pipeta, acérquese a la célula con la pipeta. Cuando se haga contacto con la célula, libere la presión positiva para sellar la pipeta a la membrana. Luego, establezca el potencial de retención de la membrana en -60 milivoltios, y la pipeta debe formar un sello de gigaohmio con la membrana celular. La corriente de retención debe caer a un nivel bajo de sub-picoamperios.
Para obtener sellos de gigaohmios constantes, asegúrese de mantener su pipeta limpia manteniendo una presión positiva y evite golpear el tejido al acercarse a sus células.
Para continuar, configure el amplificador para que entregue pulsos de prueba de -50 a -60 milivoltios. Los pulsos de prueba revelarán un gran transitorio capacitativo que representa la corriente necesaria para cargar la pipeta de parche. Para eliminar los transitorios capacitativos, ajuste las perillas de compensación de capacidad del amplificador.
Ahora, aplique breves pulsos de presión negativa para romper la membrana celular y obtener la configuración de toda la célula. Un gran aumento en los transitorios capacitativos indica éxito. También se debe observar un pequeño aumento en la corriente de retención. Luego, configure el amplificador en modo de pinza de corriente y ajuste el potencial de la celda entre -50 y -60 milivoltios.
El potencial de retención puede ajustarse para enfatizar las conexiones excitatorias o inhibitorias en consecuencia. Una vez verificada la conexión, configure la perfusión salina para la recirculación de la solución salina. Configure las bombas para que el nivel de solución salina en el baño se mantenga estable.
Luego, agregue suficiente tetrodotoxina al sistema para una concentración final de un micromolar. Esto debería detener la actividad de pico de la neurona parcheada. Si no es así, agregue más tetrodotoxina al sistema. Ahora, aplique breves pulsos de luz roja para activar lo que probablemente sea una conexión monosináptica.