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Tome un chip microfluídico que contenga neuronas del hipocampo de rata.
El chip presenta reservorios somáticos y axonales, con compartimentos divididos por microsurcos, compartimentando efectivamente las neuronas y aislando las regiones somáticas y axonales.
Retire el medio y agregue formaldehído. Incubar para fijar las neuronas y preservar su estructura.
Retire el exceso de formaldehído y lave con tampón. Luego, agregue un detergente para permeabilizar las neuronas.
Reemplace el detergente con una solución de bloqueo para bloquear los sitios de unión no específicos.
Retire la solución de bloqueo e incube con anticuerpos primarios que se unen a marcadores sinápticos neuronales específicos, que son proteínas integrales de membrana en las vesículas sinápticas.
Retire los anticuerpos no unidos y lave con tampón.
Incubar con anticuerpos secundarios marcados con fluoróforo que se unen a los anticuerpos primarios dirigidos a marcadores sinápticos.
Retire los anticuerpos secundarios no unidos y lave con tampón.
Bajo un microscopio confocal, obtenga una imagen del chip para visualizar los marcadores sinápticos neuronales fluorescentes.
Para comenzar la inmunotinción de fluorescencia, retire la mayor parte del medio del chip, manteniendo hidratados los compartimentos interiores. Inmediatamente, agregue 100 microlitros de solución de fijación a los pocillos superiores de los compartimentos axonal y somático.
Después de un minuto, agregue 100 microlitros de solución de fijación a los pocillos inferiores y fije las células durante 30 minutos a temperatura ambiente. Retire la mayor parte de la solución de los pocillos e inmediatamente agregue 150 microlitros de PBS a cada uno de los pocillos superiores de los compartimentos axonal y somático. Espere dos minutos para que el PBS fluya hacia los pocillos inferiores, luego, retire el PBS y enjuague los pocillos dos veces más usando este mismo proceso.
Después del último enjuague, retire la mayor parte del PBS de los pocillos del chip e inmediatamente agregue 150 microlitros de PBS con Triton X-100 al 0,25% a cada uno de los pocillos superiores de los compartimentos axonal y somático.
Espere 15 minutos y luego, retire la mayor parte del líquido de los pocillos. Agregue inmediatamente 150 microlitros de solución de bloqueo a cada uno de los pocillos superiores de los compartimentos axonal y somático. Después de 15 minutos, retire la mayor parte del líquido de los pocillos e inmediatamente agregue 100 microlitros de la solución de anticuerpos primarios a cada uno de los pocillos superiores de los compartimentos axonal y somático.
Cubra el chip para minimizar la evaporación e incube las células en el anticuerpo primario durante una hora a temperatura ambiente. A continuación, enjuague el chip eliminando la mayor parte de la solución e inmediatamente agregando 150 microlitros de PBS a cada uno de los pocillos superiores de los compartimentos axonal y somático. Después de cinco minutos, retire el PBS de ambos pocillos y repita el enjuague dos veces más.
Ahora, retire la mayor parte del líquido de los pocillos e inmediatamente agregue 100 microlitros de anticuerpo secundario en PBS a cada uno de los pocillos superiores de los compartimentos axonal y somático. Cubra el chip para minimizar la evaporación e incube el chip durante una hora a temperatura ambiente. Como se mostró anteriormente, enjuague el chip tres veces con PBS. Luego, monte y cree imágenes de los chips como se describe en el protocolo de texto adjunto.