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Neurociencia
0 vistas • 2:57 min • July 8th, 2025
Tome larvas de Drosophila de tercer estadio y anestesíelas con dióxido de carbono.
Bajo un microscopio, coloque las larvas con la superficie ventral hacia arriba para visualizar los nervios segmentarios.
Estos nervios contienen neuronas motoras que inervan los músculos de la pared del cuerpo y controlan el movimiento de las larvas.
Las terminales axonales de estas neuronas se conectan con las fibras musculares para formar uniones neuromusculares o NMJ.
Las neuronas liberan neurotransmisores que se unen a los receptores en las fibras musculares, causando la afluencia de iones y desencadenando la transmisión de señales.
Con fórceps, pellizque la cutícula ventral para lesionar los nervios segmentarios, inhibiendo así el movimiento.
Coloque las larvas heridas en una placa de agar con alimento para larvas para asegurar la supervivencia.
Coloque el plato en un plato, cúbralo con una toalla de papel húmeda para mantener la humedad y guárdelo en un recipiente para permitir la recuperación de las larvas.
Con el tiempo, la lesión conduce a la muerte de las neuronas motoras, conocida como neurodegeneración, que interrumpe las NMJ.
Coloque cada larva en un aparato de anestesia de CO2. Bajo un microscopio de disección, enrolle con cuidado cada larva sobre su lado dorsal para visualizar los nervios segmentarios en toda la cutícula.
Es esencial enrollar cuidadosamente cada larva sobre su lado dorsal para visualizar los nervios segmentarios a través de la cutícula antes de lesionarse.
Comenzando en los ganchos de la boca, coloque las pinzas de tamaño 5 aproximadamente de la mitad a 2/3 del camino a lo largo de las larvas. Una vez colocado, pellizque aproximadamente un tercio de la cutícula ventral que contiene los nervios segmentarios con fórceps de tamaño 5. Para asegurarse de que los nervios segmentarios larvarios estén lesionados, aplique suficiente fuerza para aplastar los nervios segmentarios, pero deje la cutícula intacta. Para determinar la cantidad correcta de fuerza, triture 10 larvas y asegúrese de que la tasa de mortalidad después de cinco horas sea inferior al 50%.
Después de la lesión, transfiera con cuidado las larvas a una placa de agar de jugo de frutas que contenga aproximadamente 0,5 gramos de pasta de levadura. Coloque cada larva de modo que su extremo anterior quede sobre la pasta de levadura para continuar alimentándola. Coloque placas de agar que contengan pasta de levadura y 10 larvas heridas en el fondo de una placa de Petri vacía de 100 por 15 milímetros. Cubra la placa de Petri con una toalla de papel húmeda, asegurándose de que la toalla de papel no toque las larvas o las placas de agar. Luego, coloque la placa de Petri en un recipiente hermético a temperatura ambiente. Finalmente, recupere las larvas para su disección después de períodos específicos después de la lesión.
Este artículo describe un método para inducir y estudiar la neurodegeneración en larvas de Drosophila de tercer estadio mediante la lesión de nervios segmentarios. El proceso consiste en anestesiar las larvas, lesionar los nervios y monitorear los efectos sobre la función de las neuronas motoras y las uniones neuromusculares.
Este método permite la validación de dianas en la investigación de la neurodegeneración al proporcionar un modelo controlado e inducible de lesión de neuronas motoras en Drosophila. Apoya la reducción mecanicista de riesgos en hipótesis terapéuticas al vincular la lesión del nervio segmentario con la alteración cuantificable de la unión neuromuscular. El enfoque ofrece una confianza predictiva para la selección inicial de dianas en programas de enfermedades neurodegenerativas.
El método se integra en el continuo de descubrimiento, desde la prueba de hipótesis sobre dianas hasta el cribado fenotípico y la validación mecanicista en programas de neurodegeneración.
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Última actualización: 29 agosto 2026