Visualización de las motilidades de las vesículas en las neuronas mediante imágenes de fluorescencia

0 views • 3:45 min • July 8th, 2025

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Tome el plásmido deseado en un medio sin suero. Este plásmido codifica proteínas específicas de vesículas con etiquetas fluorescentes.

En otro tubo, tome el reactivo de transfección diluido en un medio sin suero.

Mezclar las dos soluciones e incubar.

El reactivo de transfección se combina con el plásmido, formando un complejo.

Tome un pozo que contenga neuronas adherentes en los medios con suero. Agrega los complejos e incuba. El complejo facilita la entrada del plásmido en la célula.

Deseche el medio para eliminar los complejos no internalizados.

Agregue medios nuevos y luego incube.

El plásmido ingresa al núcleo para ser transcrito y luego se traduce en proteínas fluorescentes específicas de vesículas que marcan las vesículas en las neuronas.

Usando un microscopio de fluorescencia a temperatura controlada, adquiera imágenes a intervalos de tiempo específicos.

Para analizar las imágenes, defina los parámetros de seguimiento.

Identifica la vesícula de interés y registra sus coordenadas en cada una de las imágenes.

Recopile los datos para visualizar el movimiento de la vesícula.

En este procedimiento, mezcle 4 microgramos de plásmido con 200 microlitros de medio sin suero. En un tubo separado, diluya ocho microlitros del reactivo de transfección en 200 microlitros de medio sin suero. Luego, incube la solución durante 5 minutos a temperatura ambiente. Después de cinco minutos, mezcle la solución plásmida y la solución reactiva de transfección, e incube la mezcla durante 20 minutos a temperatura ambiente. Después de eso, agregue la mezcla a los platos con fondo de vidrio recubierto.

Incube las neuronas a 37 grados centígrados durante 30 minutos. Luego, reemplace el medio con 2 mililitros de medio de cultivo cortical cerebral e incube las neuronas a 37 grados Celsius durante uno o dos días.

Para obtener imágenes, use un microscopio de fluorescencia equipado con una cámara CCD con lentes de objetivo de 40x. Mantenga la temperatura a 37 grados centígrados utilizando un sistema de incubación. Adquiera imágenes neuronales a 1 fotograma cada 5 segundos durante un período de 100 segundos controlado por el software de adquisición de imágenes.

Para analizar las imágenes, abra todas las imágenes secuenciales en el software ImageJ con seguimiento manual. Para combinar las imágenes secuenciales, elija Imagen, luego Pilas seguidas de Imágenes para apilar y luego haga clic en Aceptar. Después de eso, elija Complementos, luego Seguimiento manual. Aparecerá una ventana de seguimiento. Haga clic en la casilla de verificación de Mostrar parámetros y defina los parámetros de seguimiento en la sección de parámetros.

A continuación, haga clic en Añadir pista para iniciar una nueva pista. Después de determinar las vesículas de interés, haga clic en el centro de las señales en las imágenes secuenciales para registrar las coordenadas XY. Repita este procedimiento para recopilar las coordenadas XY de las vesículas de todas las imágenes secuenciales. Cada imagen avanza automáticamente a la imagen sucesiva después de seleccionar el punto de referencia.

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Last updated: 18 July 2026