JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurociencia
0 vistas • 3:22 min • July 8th, 2025
Tome secciones cerebrales ultradelgadas fijadas químicamente e incrustadas en resina de larvas de pez cebra sanas y con lesiones cerebrales montadas en una rejilla de un solo orificio.
Las secciones se tiñen con metales pesados para mejorar el contraste de la imagen durante las imágenes microscópicas.
Coloque la rejilla en un soporte para muestras y transfiéralo a la cámara de microscopía.
Alinee la rejilla debajo del cañón de electrones, que genera un haz de electrones.
Una serie de lentes y bobinas electromagnéticas enfoca el haz de electrones en las secciones.
Mueva el portamuestras para escanear las secciones en un patrón de trama.
A medida que el haz de electrones pasa a través de las secciones de tejido, las regiones densas en electrones teñidas dispersan más electrones, mientras que las regiones no teñidas transmiten los electrones.
El detector recopila estas señales de electrones, creando imágenes cerebrales de alta resolución.
En comparación con el control, el cerebro lesionado muestra una microglía fagocítica que contiene numerosas inclusiones intracelulares, un rasgo característico de la neurodegeneración inducida por lesiones.
Para montar la muestra en el microscopio electrónico de barrido o SEM, coloque la rejilla de la caja de transferencia con la sección en el soporte de muestras de rejilla múltiple y transfiérala a la cámara del SEM. Después de alinear el detector de acuerdo con el protocolo de texto, irradie previamente la muestra alejando el zoom para que el área completa a escanear se ajuste a la ventana de imagen. Una vez que se haya cambiado la apertura a 120 micrómetros y se haya desenfocado la imagen, utilice la opción de escaneo de área reducida para que el área escaneada sea lo más ajustada posible.
A continuación, configure la velocidad de fotogramas para escanear un fotograma en aproximadamente 1 a 2 segundos. Luego, acerque al menos 100x y escanee un área pequeña durante diez segundos. Si el brillo en el área aún cambia, continúe con la preirradiación. Cuando esta área no cambia de brillo en comparación con su entorno, la irradiación previa es suficiente.
Mientras está enfocado, seleccione el área o característica más clara y configure la velocidad de escaneo para que los detalles sean visibles. En el software del microscopio, ajuste el brillo y el contraste observando cuidadosamente el histograma para mantener todos los píxeles en el rango dinámico. Haz lo mismo con las áreas y características más oscuras. Regrese al área brillante y verifique nuevamente para que haya algo de espacio a ambos lados del histograma.
Para los pasos 4-6 a 4-8, el ajuste del brillo y el contraste debe hacerse con mucho cuidado para que toda el área esté dentro del rango dinámico.
Aléjese para que el área completa que se va a escanear se ajuste a la ventana de imágenes e inicie el programa de adquisición de área grande. A continuación, utilice la opción Asistente para configurar un mosaico seleccionando un área de la pantalla.
Utilice un tamaño de píxel de 2 a 5 nanómetros dependiendo de los detalles necesarios y establezca un tiempo de permanencia de tres microsegundos para microscopía electrónica de transmisión de barrido o STEM. Presione Optimizar para verificar la configuración del microscopio y se mostrará el tiempo necesario. Luego, vuelva a encender el generador de escaneo externo y presione Continuar.
Este artículo detalla una metodología para obtener imágenes de secciones cerebrales de larvas de pez cebra mediante microscopía electrónica. El enfoque consiste en comparar tejidos cerebrales sanos y dañados para identificar cambios neurodegenerativos.
La obtención de imágenes de alta resolución de lesiones cerebrales en larvas de pez cebra permite reducir riesgos mecanicistas durante la validación temprana de objetivos al visualizar fenotipos neurodegenerativos a escala ultraestructural. Este enfoque fortalece la confianza predictiva en modelos preclínicos al vincular la patología celular con resultados funcionales, orientando decisiones de avance o interrupción en programas de neurodegeneración. El método mejora la continuidad traslacional desde el descubrimiento hasta la validación preclínica mediante lecturas morfológicas cuantitativas y reproducibles.
El método se integra en la continuidad del descubrimiento, desde la validación del blanco hasta la obtención de imágenes preclínicas, proporcionando confirmación ultraestructural de los éxitos en cribados fenotípicos y apoyando criterios de avance/no avance basados en la fidelidad histopatológica.
Videos relacionados
0 Vistas
Videos relacionados
0 Vistas
Videos relacionados
0 Vistas
Videos relacionados
0 Vistas
Videos relacionados
0 Vistas
Videos relacionados
0 Vistas
Videos relacionados
0 Vistas
Videos relacionados
0 Vistas
Videos relacionados
0 Vistas
Videos relacionados
0 Vistas
Última actualización: 29 agosto 2026