Modelo de invasión tumoral basado en matriz mediante cocultivo de glioblastoma de microglía

0 vistas3:23 min • July 8th, 2025

Comience agregando una suspensión fría de glioblastoma y células microgliales, cada una teñida con un tinte fluorescente distinto, en una solución de matriz de polímero fría.

La condición de frío evita la polimerización prematura de la matriz.

A continuación, transfiera la mezcla a un inserto de cámara porosa dentro de una placa de cultivo.

Incubar para permitir la polimerización de la matriz, formando un gel que incrusta las células.

Agregue medios sin suero al inserto y medios de crecimiento que contengan suero al pozo de abajo, luego incube.

Los factores químicos en el suero promueven la migración celular hacia los medios ricos en suero.

Además, la microglía secreta moléculas de señalización que interactúan con las células de glioblastoma.

Esto mejora la migración de células de glioblastoma a la parte inferior del inserto poroso, similar a su migración de un tumor al tejido circundante.

Retire las celdas de la parte superior de la cámara.

Ahora, fije las células restantes con un fijador y lávelas con tampón. La fluorescencia distintiva de las células ayuda a rastrear la migración celular.

Descongele la mezcla de matriz a cuatro grados centígrados durante la noche. A continuación, prepare una concentración de 10 mg/ml de matriz en el medio apropiado sobre hielo. Luego, recolecte las células etiquetadas para suspenderlas en la matriz como se mostró anteriormente. Luego, pipetee 1,5 veces 10 a la quinta celda GL261 en un volumen de 150 microlitros, más cinco veces 10 a la cuarta célula de microglía en 50 microlitros en un tubo de microfuga de 1,5 mililitros.

Agregue 2 veces 10 a las quintas celdas GL261 en un volumen de 200 microlitros en un tubo de microfuga separado de 1,5 mililitros. Gire las células en una microfuga durante cinco minutos a 120 veces g. Luego, vuelva a suspender las células en 200 microlitros de matriz fría sobre hielo.

Para este paso, es crucial tener lista la bandeja de hielo en la campana. Mantenga los tubos en puntas de hielo en el refrigerador. Asegúrese de que todo esté frío para evitar la polimerización prematura del gel maduro.

Después de la suspensión, coloque 50,000 celdas en un volumen de 50 microlitros en el centro del compartimiento superior de un inserto de cámara de tamaño de poro de 8 micrones. Luego, incube a 37 grados centígrados durante 30 minutos para permitir que se produzca la polimerización. Después de 30 minutos, agregue 200 microlitros de medio sin suero a la cámara superior y 700 microlitros de suero que contenga medio de crecimiento celular al pocillo inferior.

Después de incubar durante 48 horas, retire las células de la parte superior de la cámara mediante una aspiración suave. Fije las cámaras como antes y reemplace el fijador con 500 microlitros de 1X PBS antes de obtener imágenes de las células.

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Última actualización: 29 agosto 2026