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Tome una microplaca con insertos transwell recubiertos con proteínas ECM para promover la adhesión celular.
Agregue células endoteliales microvasculares del cerebro humano, o HBMEC, en los insertos y un medio de crecimiento en los compartimentos inferiores.
Incubar, permitiendo que las células se adhieran y crezcan en una monocapa. Estas células expresan uniones estrechas, imitando el endotelio de la barrera hematoencefálica que limita el paso de células y moléculas.
Retire el medio. Agregue células mononucleares de sangre periférica, o PBMC, a los insertos y un medio de cultivo a los compartimentos inferiores.
Incubar, permitiendo que los linfocitos PBMC interactúen con las células endoteliales y luego pasen entre ellas, un proceso llamado transmigración.
Enjuague el fondo del inserto, recogiendo las células transmigradas adheridas en los compartimentos inferiores.
Introducir microperlas fluorescentes como referencia para la cuantificación celular.
Transfiera la suspensión a un tubo, centrifuge, deseche el sobrenadante y vuelva a suspender en un cóctel de anticuerpos conjugados con fluoróforo para etiquetar los linfocitos.
Los linfocitos transmigrados están listos para la cuantificación mediante citometría de flujo.
Para preparar los insertos de cultivo celular para un ensayo de transmigración, primero, agregue 100 microlitros de solución de fibronectina a cada inserto y a un pocillo de una placa de fondo plano de 96 pocillos. Después de tres horas a 37 grados Celsius, reemplace la solución de fibronectina con 100 microlitros de HBMEC y agregue 600 microlitros de medio ECM-b fresco a los compartimentos inferiores de los insertos de cultivo celular.
Luego, devuelva las placas a la incubadora de cultivos celulares durante tres o cuatro días. Vuelva a suspender la muestra de células mononucleares de sangre periférica, o PBMC, a una concentración de 5 veces 10 a 6 células por mililitro en medio RPMI suplementado con B27. A continuación, aspire el medio de los compartimentos inferior y superior del número apropiado de insertos de cultivo celular que contengan las monocapas confluentes de HBMEC y agregue 100 microlitros de PBMC por donante a los insertos de cultivo celular y a un pocillo de una placa de 24 pocillos por control in vitro.
Agregue 600 microlitros de RPMI más B27 a los compartimentos inferiores de los insertos de cultivo celular y 500 microlitros a los pocillos de control in vitro, y devuelva las placas a la incubadora de cultivo celular durante seis horas. Al final de la incubación, use fórceps para retirar los insertos de cultivo celular, enjuagando cuidadosamente los fondos con 400 microlitros de PBS sin tocar las membranas.
Luego, mezcle bien 20 microlitros de fluorosferas de conteo de flujo con las células en los pozos de control experimental e in vitro, y transfiera 1 mililitro de las suspensiones de PBMC resultantes a los tubos de citometría de flujo correspondientes apropiados. Recolecte las células por centrifugación y agregue los anticuerpos conjugados con fluorocromo de interés en 100 microlitros de tampón de citometría de flujo a cada muestra. Después de 30 minutos a 4 grados centígrados, lave las células con 250 microlitros de tampón de citometría de flujo fresco y vuelva a suspender los gránulos en el volumen apropiado de tampón de citometría de flujo para su análisis.