Ensayo de fagocitosis de células vivas de células similares a la microglía utilizando sinaptosomas humanos

0 vistas3:28 min • April 28th, 2025

Tome una placa de pocillos múltiples que contenga células similares a la microglía que exhiban actividad fagocítica.

Incubar con una tinción nuclear para etiquetar los núcleos.

Agregue un inhibidor de polimerización de actina al pocillo de control negativo.

Durante la incubación, el inhibidor se une a los filamentos de actina, inhibiendo la polimerización de la actina y la fagocitosis.

Mantenga la placa a bajas temperaturas y agregue sinaptosomas humanos marcados con colorante sensible al pH: fragmentos aislados de terminales sinápticos neuronales.

Centrifugar la placa a bajas temperaturas para promover las interacciones célula-sinaptosoma, pero evitar la absorción prematura.

Transfiera la placa a un sistema de imágenes de células vivas.

En el pozo de prueba, los sinaptosomas se fagocitan y se fusionan con los lisosomas formando fagolisosomas. El ambiente ácido lisosomal activa el colorante, lo que da como resultado su fluorescencia.

Con el tiempo, en el pozo de prueba, se engullen más sinaptosomas causando un mayor aumento de la fluorescencia.

Sin embargo, en el pozo de control negativo, se inhibe la polimerización de la actina, lo que impide la captación de sinaptosomas. La mínima fluorescencia resultante confirma la dependencia de la fluorescencia de la fagocitosis mediada por actina.

El día del ensayo, retire 40 microlitros de medio por pocillo y agregue 10 microlitros de la solución de tinción nuclear. Incuba el plato durante dos horas. Descongele los sinaptosomas marcados en hielo y sonique suavemente con un sonicador de agua durante un minuto. Nuevamente, coloque inmediatamente los sinaptosomas en hielo. Diluya los sinaptosomas marcados y el medio completo IMG a 1 microlitro de sinaptosomas por 50 microlitros de medio.

Para el control negativo, prepare 60 citocalasina D micromolar en medio completo IMG para inhibir la polimerización de la actina y, por lo tanto, la fagocitosis. Luego, agregue 10 microlitros de esta solución a cada pocillo para obtener una concentración final de 10 micromolares e incube durante 30 minutos. Retire la placa de la incubadora e incube a 10 grados centígrados durante 10 minutos. Mantener el plato en hielo y añadir 50 microlitros de medio que contenga sinaptosomas.

Centrifugar la placa a 270 veces g durante tres minutos a 10 grados Celsius y mantener la placa en hielo hasta la adquisición de imágenes. Inserte la placa en un lector de imágenes de células vivas y seleccione los pocillos que se analizarán. Luego, seleccione una lente de objetivo de 20x. A continuación, ajuste el tiempo de integración de la intensidad del LED o del diodo emisor de luz de enfoque y la ganancia del campo brillante y los canales azules. La fluorescencia de los sinaptosomas debe ser insignificante en el punto de tiempo inicial.

Seleccione el número de mosaicos individuales que se adquirirán en un montaje por pozo. Adquiera 16 mosaicos en el centro del pozo, obteniendo imágenes de aproximadamente el 5% del área total del pozo. Ajuste la temperatura a 37 grados Celsius y el intervalo de tiempo deseado para la obtención de imágenes.

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Última actualización: 29 agosto 2026